WO2012072366A1 - Vorrichtung zur kontrollierten abgabe von pheromonen und dessen verwendung zum anlocken von schadinsekten - Google Patents

Vorrichtung zur kontrollierten abgabe von pheromonen und dessen verwendung zum anlocken von schadinsekten Download PDF

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WO2012072366A1
WO2012072366A1 PCT/EP2011/069381 EP2011069381W WO2012072366A1 WO 2012072366 A1 WO2012072366 A1 WO 2012072366A1 EP 2011069381 W EP2011069381 W EP 2011069381W WO 2012072366 A1 WO2012072366 A1 WO 2012072366A1
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WO
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pheromones
pheromone
rubber matrix
rubber
carrier material
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Application number
PCT/EP2011/069381
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English (en)
French (fr)
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Jens Storre
Thomas Perkovic
Thomas ZÜHLKE
Jürgen JENTZSCH
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Contitech Elastomer-Beschichtungen Gmbh
Basf Se
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    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N25/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests
    • A01N25/26—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests in coated particulate form
    • A01N25/28—Microcapsules or nanocapsules
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N31/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic oxygen or sulfur compounds
    • A01N31/06—Oxygen or sulfur directly attached to a cycloaliphatic ring system

Definitions

  • the invention relates to a device for controlled release of pheromones from a rubber matrix, in which a carrier material which is loaded with pheromones, is incorporated, wherein the loading amount of all pheromones with respect to the
  • the invention relates to a composite of several of these devices for attracting injurious insects and the use of the device in traps for arresting injurious insects.
  • Pheromones as insect control agents have been known for years. They are z. B. in forest protection in the context of integrated control of pests, preferably bark beetles used (see, for example, DE 2800479 C2, EP 390074 B l).
  • the pheromones as attractants are optimally effective when they are evenly dispensed from the dispensers in the insect traps in the composition suitable for the particular insect.
  • the delivery period is significantly influenced by the climatic conditions of the location.
  • pheromone dispensers exist in foil bags made of polyethylene, in which there is an absorbent, cellulosic material that with
  • Pheromone is soaked.
  • hollow chamber dispensers made of thermoplastic materials with special wall thicknesses are known in which the pheromones diffuse through the container walls due to the permeability of the plastics (see, for example, EP 273 197 A1).
  • the cellulosic material and the hollow chambers can only absorb a limited amount of pheromone and therefore have a limited duration of action.
  • higher loading of such pheromone dispensers does not result in a prolonged duration of action, but rather in an increased delivery rate per day.
  • a uniform delivery of pheromones over as long a period as possible is not always given.
  • an insufficient and / or uneven delivery of pheromones or their components in extreme cases still causes the insects are attracted, but can no longer be trapped in traps.
  • WO 2006/037546 A1 describes pheromone dispensers in which a carrier material, which is loaded with pheromone, is incorporated in a matrix of a polymer material, such as, for example, rubber.
  • the carrier material may be a molecular sieve or a silica gel, the loading amount of all
  • the invention is based on the object to provide a device for the controlled delivery of pheromones, which even under unfavorable climatic conditions, taking into account economic considerations over a longest possible period of uniform delivery of pheromones.
  • the device according to the invention also allows under unfavorable climatic conditions, such as changing temperature and light conditions, a reliable control and locking of insects.
  • the rubber matrix is based on at least one rubber having a Mooney viscosity of 45 to 90 MLi + 4 (100 ° C.). It come z. As nitrile or natural rubber in question. The matrix thereby has a stickiness which makes it possible to glue several devices of the aforementioned type together to form a composite. It succeeds by combining several
  • the rubber matrix is based on at least two different rubbers with different Mooney viscosities. For example, it is possible to use two rubbers, the first having a Mooney viscosity of 45 MLi + 4 (100 ° C.) and the second having a Mooney viscosity of 90 MLi + (100 ° C.).
  • the rubber with the Mooney viscosity of 45 MLi + (100 ° C.) and the rubber with the Mooney viscosity of 90 for example in the ratio of 3: 1, are then used. For less tacky devices, the ratio can be reversed.
  • the pheromone controlled release device may contain up to 25% by weight of at least one inert light filler. This allows the strength and tackiness of the device to be controlled.
  • the inert, light filler may be, for example, precipitated silica (amorphous SiO 2 ), chalk (CaCO 3 ) or talc (magnesium silicate).
  • the Mooney viscosity and thus the tackiness of the rubber matrix can, according to an advantageous development of the invention, also be controlled via the crosslinking of the rubber matrix.
  • a crosslinking resin system such as Vulkadur® A can be used to reduce tackiness or increase strength.
  • the rubber matrix may also contain other additives such as desiccants
  • the said aggregates of the rubber matrix surprisingly do not affect the continuous release of the pheromones from the device.
  • silica gels silica gels
  • molecular sieves molecular sieves
  • Typical pore sizes of molecular sieves are 3, 4, 5, 10, and 13 angstroms, with a pore size of 5 to 15 angstroms, especially 8 to 3 angstroms, being preferred.
  • the molecular sieves can be used in spherical or powder form, the powder form being preferred.
  • the rubber matrix has up to 10% by weight of at least one indicator of desiccant, which shows a color change after absorption of water molecules.
  • the color indicators initially show a color change on the surface and in the course of a color change in the entire device. The release status of pheromone is thus clearly visible from the outside. This protects the user from unnecessary too early replacement and thus unnecessary costs.
  • conventional color indicators that react to water can be used, for example, CuSO 4 anhydrous, Co (II) Cl 2, H 4 Fe (SO 4 ) 2. These are on one
  • Desiccant such as silica gel applied.
  • the device according to the invention is between 0.95 and 1.40 g / cm 3 .
  • harmful insects are attracted by the pheromone present in the device according to the invention or the existing pheromones. These can then be locked in suitable catching devices and thus enable an environmentally friendly control of harmful insects.
  • Suitable pheromones are known, for example, from T.D. Wyatt, "Pheromones and Animal Behavior: Communication by Smell and Taste” Cambridge 2003: Cambridge University Press
  • Examples of pheromones include volatile alkanols and alkenols of 5 to 10 carbon atoms, alkanones of 6 to 10 carbon atoms, 1,7- Dioxaspirononane, 3- or 4-hydroxy-1,4-dioxaspiroundecane, benzyl alcohol, Z (9) tricosenes (muscalure), heneicosenes, diacetyl, alkanoic acids having 5 to 10 carbon atoms, such as caprylic acid, lauric acid, oc-pinene, methyleugenol, Ethyl dodecanoate, tert-butyl 4- (or 5-) chloro-2-ethylcyclohexane carboxylate, mycrenone, cucurbitacin,
  • the rubber matrix devices according to the invention with carrier material which is loaded with pheromones can have different shapes in terms of their shape.
  • they can be in the form of spheres.
  • the pheromones can have different shapes in terms of their shape.
  • they can be in the form of spheres.
  • devices in the form of plates of a thickness of 0.5 to 2 cm and edge lengths of 2 to 15 cm formed. These can be easily interconnected and can easily be placed in suitable fishing facilities.
  • the devices according to the invention for the controlled delivery of pheromones with a rubber matrix based on at least one rubber having a Mooney viscosity of 45 to 90 MLi + 4 (100 ° C.) can advantageously be combined into a composite.
  • the fact that the rubber matrix has a stickiness is an adaptation of the surface / volume ratio via sticking together
  • the composite provides a very simple and practical solution for a variety of variation and combination of pheromones in a composite.
  • Both the devices of the invention and the composite of multiple devices are preferably used in traps for arresting injurious insects.
  • the term damaging insects encompasses not only insects in the actual sense but also harmful arachnids, in particular as vectors responsible for the transmission of diseases.
  • pest insects are insects (Insecta) from the orders Diptera,
  • Siphonaptera Blattaria, Blattodea, Dermaptera, Hemiptera, Hymenoptera, Orthoptera, Isoptera, Thysanura, Phthiaraptera, Araneida, Lepidoptera, Coleoptera and Acarina, as well as the classes Chilopoda and Diplopoda.
  • Preference is given to insect pests of the order Diptera, Hemiptera, Hymenoptera, Acarina, Lepidoptera, Coleoptera and Siphonaptera.
  • insect pests of the order Lepidoptera and Coleoptera are especially preferred.
  • Examples of harmful insects are:
  • Insects of the order Lepidoptera such as Agrotis ypsilon, Agrotis segetum, Alabama argillacea, Anticarsia gemmatalis, Argyresthia conjugella, Autographa gamma, Bupalus piniarius, Cacoecia murinana, Cameraria ohridella, Capua reticulana, Cheimatobia brumata, Choristoneura fumiferana, Choristoneura occidentalis, Cirphis unipuncta, Cydia pomonella, Dendrolimus pini, Diaphania nitidalis, Diatraea grandiosella, Earias insulana, Elasmopalpus lignosellus, Estigmene acrea, Eupoecilia ambiguella, Evetria bouliana, Feltia subterranea, Galleria mellonella, Grapholitha funebrana, Grapho
  • Beetles such as Agrilus sinuatus, Agrilus viridis, Agrilus bigutattus, Agrilus planipennis, Agriotes lineatus, Agriotes obscurus, Amphimallus solstitialis, Anisandrus dispar, Anoplophora glabripennis, Anoplphora chinensis, Anoplpophora sp., Anthonomus grandis, Anthonomus pomorum, Aphthona euphoridae, Athous haemorrhoidalis, Atomaria linearis, Blastophage piniperda, Blitophaga undata, Bruchus rufimanus, Bruchus pisorum, Bruchus lentis, Byctiscus betulae, Cassida nebulosa, Cerotoma trifurcata, Cetonia aurata, Ceuthorrhynchus assimilis, Ceuthorrh
  • Flies mosquitoes (Diptera), such as Aedes aegypti, Aedes albopictus, Aedes vexans,
  • Anastrepha ludens Anopheles maculipennis, Anopheles crucians, Anopheles albimanus, Anopheles gambiae, Anopheles freeborn, Anopheles leucosphyrus, Anopheles minimus, Anopheles quadrimaculatus, Calliphora vicina, Ceratitis capitata, Chrysomya bezziana, Chrysomya hominivorax, Chrysomia macellaria, Chrysops discalis, Chrysops silacea, Chrysops atlanticus , Cochliomyia hominivorax, Contarinia sorghicola Cordylobia anthropophaga, Culicoides furens, Culex pipiens, Culex nigripalpus, Culex
  • quinquefasciatus Culex tarsalis, Culiseta inornata, Culiseta melanura, Dacus cucurbitae, Dacus oleae, Dasineura brassicae, Delia antique, Delia coarctata, Delia platura, Delia radicum, Dermatobia hominis, Fannia canicularis, Geomyza tripunctata, Gasterophilus intestinalis, Glossina morsitans, Glossina palpalis, Glossina fuscipes, Glossina tachinoides, Haematobia irritans, Haplodiplosis equestris, Hippe lates spp., Hylemyia platura, Hypoderma lineata, Leptoconops torrens, Liriomyza sativae, Liriomyza trifolii, Lucilla caprina, Lucilla cuprina, Lucilla sericata, Lycor
  • Fringed flyer such as Dichromothrips corbetti, Dichromothrips ssp,
  • Ants bees, wasps, wasps (Hymenoptera), like Athalia rosae, Atta cephalotes, Atta capiguara, Atta cephalotes, Atta laevigata, Atta robusta, Atta sexdens, Atta texana, Crematogaster spp., Hoplocampa minuta, Hoplocampa testudinea,
  • Arachnoid such as arachnids (Acarina), for example the families Argasidae, Ixodidae and Sarcoptidae, such as Amblyomma americanum, Amblyomma variegatum, Ambryomma maculatum, Argas persicus, Boophilus annulatus, Boophilus decoloratus, Boophilus microplus, Dermacentor silvarum, Dermacentor andersoni, Dermacentor variabilis, Hyalomma truncatum , Ixodes ricinus, Ixodes rubicundus, Ixodes scapularis, Ixodes holocyclus, Ixodes pacificus, Ornithodorus moubata, Ornithodorus hermsi, Ornithodorus turicata, Ornithonyssus bacoti, Otobius megnini, Dermanyssus gallinae, Pso
  • Tetranychidae spp. such as Tetranychus cinnabarinus, Tetranychus kanzawai, Tetranychus
  • Silverfish, sting fish such as Lepisma saccharina and Thermobia domestica
  • Centipede such as Scutigera coleoptrata
  • Lice such as Pediculus humanus capitis, Pediculus humanus corporis, Pthirus pubis, Haematopinus eurysternus, Haematopinus suis, Linognathus vituli, Bovicola bovis, Menopon gallinae, Menacanthus stramineus and Solenopotes capillatus,
  • Nematodes such as Heterodera glycines, H. avenae, H. schachtii, H. trifolii, H. gottingiana, H. cajani, H. zeae, Globoder a rostochiensis, G. pallida, G. tabacum. , Meloidogyne arenaria, M. incognita, M. javanica, M. hapla, M. chitwoodi, Ditylenchus destructor, D. dipsaci, D. angustus, Anguina tritici, A. agrostis, Afrina / Anguina wevelli, Pratylenchus penetrans, P. brachyurus, P. coffeae, P. zeae, P. goodeyi, P. thornei, P. vulnus,
  • pest insects of the order Lepidoptera are those of the family Gracillariidae, especially the subfamilies Thaumetopoeinae, Cossinae, Zeuzerinae, Larentinae, Ennominae.
  • Particularly preferred insect pests of the order Lepidoptera are oak processiffy spinner (Thaumetopoea processionea),
  • Pine Procession Moth (Thaumetopoea pityocampa), Willow Drill (Cossus cossus), Blue screen (Zeuzera pyrina), sponge (Lymantria dispar),
  • pest insects of the order Coleoptera are those of the family Curculionidae, Bupraestoidae, Cerambycidae, Scarabaeidae, and Hemiptera, especially the subfamilies Scolytinae, Molytinae, Rhynchophorinae, Agrilinae;
  • Pest insects of the order Coleoptera are book printers (Ips typographus), oak chip beetle (Scolytus intricatus), large elm beetle (Scolytus scolytus), engraver (Pityogenes chalcographus), giant beetle (Dentroctonus micans), mountain pine beetle (Dendroctonus ponderosae), large brown weevil (Hylobius abietis ), Green weevil (Phyllobius spec), palm weevil (Rhynchophorus ferrugineus), beech specimen beetle (Agrilus viridis), deciduous beetle (Agrilus spec), whale-barked oak beetle
  • Especially preferred pest insects are book printers (Ips typographus).
  • Aluminum foil with two chambers contains 3.0 g species-specific attractant of the
  • the pheromone blend for attracting the book printer (3.56 wt.% Cis-verbenol, 0.36 wt.% Ipsdienol and 96.08 wt.% 2-methylbut-3-en-2-ol) and a molecular sieve of the Sylosiv type ® A10 (pore size 1 nm) from WR Grace & Co., USA, were mixed together at -40 ° C in a weight ratio of 50:67. 117 g of this pheromone-loaded molecular sieve were mixed in a 857.1 g mixer
  • Natural rubber (Crepe 1) with a Mooney viscosity of 70 - 90 ML 1 + 4 (100 ° C) (trade name or source), 25.7 g titanium dioxide as white pigment, 17, 1 g CaO as
  • Table 1 gives the composition for device B as well as possible
  • the amount of pheromone and molecular sieve per mixture batch also increased, for. B. doubled, to achieve the same amount of pheromones a lower device weight.
  • the devices from variant B were glued together two times (variant C) or three times (variant D) so that the pheromone amount per composite was 5.0 g or 7.5 g.
  • Variants B to D according to the invention by a significantly higher catchability, so, for example, in the period from 10.07. until 06.09. through the conventional pheromone ampoule only 143 book printers are locked while through the
  • Variants C and D showed that by combining two or three individual devices an even longer duration of action can be achieved. While the commercial dispensers A are changed every 6-8 weeks during the season should, with the devices of the invention a single application per season was sufficient.

Abstract

Die Erfindung betrifft eine Vorrichtung zur kontrollierten Abgabe von Pheromonen aus einer Kautschukmatrix, in die ein Trägermaterial, das mit Pheromonen beladen ist, eingearbeitet ist, wobei die Beladungsmenge aller Pheromone in Bezug auf die Gesamtmenge aus Trägermaterial und Pheromon 20 bis 60 Gew.-% beträgt. Ferner betrifft die Erfindung einen Verbund aus mehreren dieser Vorrichtungen zum Anlocken von schädigenden Insekten sowie die Verwendung der Vorrichtung in Fallen zur Arretierung von schädigenden Insekten. Für eine gleichmäßige Abgabe von Pheromonen über einen möglichst langen Zeitraum beträgt das Massenverhältnis von Kautschukmatrix zu Trägermaterial mit Pheromon 1 : 0,1 bis 1 : 0,18.

Description

Beschreibung
VORRICHTUNG ZUR KONTROLLIERTEN ABGABE VON PHEROMONEN UND DES SEN VERWENDUNG
ANLOCKEN VON SCHADINSEKTEN
Die Erfindung betrifft eine Vorrichtung zur kontrollierten Abgabe von Pheromonen aus einer Kautschukmatrix, in die ein Trägermaterial, das mit Pheromonen beladen ist, eingearbeitet ist, wobei die Beladungsmenge aller Pheromone in Bezug auf die
Gesamtmenge aus Trägermaterial und Pheromon 20 bis 60 Gew.-% beträgt. Ferner betrifft die Erfindung einen Verbund aus mehreren dieser Vorrichtungen zum Anlocken von schädigenden Insekten sowie die Verwendung der Vorrichtung in Fallen zur Arretierung von schädigenden Insekten.
Pheromone als Mittel zur Bekämpfung von Insekten sind seit Jahren bekannt. Sie werden z. B. im Waldschutz im Rahmen der integrierten Bekämpfung von Schädlingen, bevorzugt von Borkenkäfern, eingesetzt (s. z. B. DE 2800479 C2, EP 390074 B l). Die Pheromone als Lockstoffe sind optimal wirksam, wenn sie aus den Dispensern in den Insektenfallen in der für das entsprechende Insekt passenden Zusammensetzung gleichmäßig abgegeben werden. Die Abgabedauer wird dabei wesentlich von den klimatischen Verhältnissen des Standortes beeinflusst.
Bekannte Ausgestaltungen von Pheromondispensern bestehen in Folienbeuteln aus Polyethylen, in denen sich ein saugfähiger, zelluloseartiger Stoff befindet, der mit
Pheromon getränkt ist. Außerdem sind auch Hohlkammerdispenser aus thermoplastischen Kunststoffen mit speziellen Wandstärken bekannt, bei denen durch die Permeabilität der Kunststoffe die Pheromone durch die Behälterwände diffundieren (s. z. B. EP 273 197 AI). Der zelluloseartige Stoff und die Hohlkammern können nur eine begrenzte Menge an Pheromon aufnehmen und weisen daher eine begrenzte Wirkdauer auf. Außerdem hat sich herausgestellt, dass eine höhere Befüllung derartiger Dispenser mit Pheromon nicht zu einer verlängerten Wirkdauer, sondern eher zu einer erhöhten Abgabemenge pro Tag führt. Eine gleichmäßige Abgabe von Pheromonen über einen möglichst langen Zeitraum ist damit nicht in jedem Fall gegeben. Zudem bewirkt eine unzureichende und/oder ungleichmäßige Abgabe von Pheromonen bzw. deren Komponenten im Extremfall zwar noch, dass die Insekten angelockt werden, jedoch nicht mehr in Fallen arretiert werden können.
In der WO 2006/037546 AI werden Pheromondispenser beschrieben, bei denen in eine Matrix aus einem Polymerwerkstoff, wie beispielsweise Kautschuk, ein Trägermaterial, das mit Pheromon beladen ist, eingearbeitet ist. Bei dem Trägermaterial kann es sich um ein Molekularsieb oder ein Silica-Gel handeln, wobei die Beladungsmenge aller
Pheromone in Bezug auf die Gesamtmenge aus Trägermaterial und Pheromon 20 bis 60 Gew.-% beträgt. Auch dieses Trägermaterial ist in seiner Beladungsmenge mit
Pheromonen begrenzt. Als Massenverhältnis von Matrix (Kautschukmatrix) zur Summe der Trägermaterial/Pheromon-Addukte werden Werte von 1 : 0,5 bis 1 : 3 angegeben. Es hat sich gezeigt, dass bei diesen Verhältnissen eine optimale gleichmäßige
Pheromonabgabe über eine möglichst langen Zeitraum nicht in jedem Fall gegeben ist.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zu Grunde, eine Vorrichtung zur kontrollierten Abgabe von Pheromonen bereitzustellen, die auch unter ungünstigen klimatischen Verhältnissen unter Beachtung von ökonomischen Gesichtspunkten über einen möglichst langen Zeitraum eine gleichmäßige Abgabe von Pheromonen aufweist.
Gelöst wird diese Aufgabe erfindungsgemäß dadurch, dass das Massenverhältnis von Kautschukmatrix zu Trägermaterial mit Pheromon 1 : 0, 1 bis 1 : 0, 18 beträgt.
Es wurde überraschenderweise gefunden, dass bereits diese geringe Menge an Pheromon auf dem Trägermaterial eingearbeitet in eine Kautschukmatrix eine längere Fangdauer aufweist als Folienbeutel- oder Hohlkammer-Dispenser. Insbesondere ermöglicht die erfindungsgemäße Vorrichtung auch unter ungünstigen Klimaverhältnissen, wie wechselnden Temperatur- und Lichtbedingungen, eine zuverlässige Kontrolle und Arretierung von Insekten. Gemäß einer bevorzugten Weiterbildung der Erfindung basiert die Kautschukmatrix auf zumindest einem Kautschuk mit einer Mooney- Viskosität von 45 bis 90 MLi+4(100 °C). Es kommen z. B. Nitril- oder Naturkautschuk in Frage. Die Matrix weist dadurch eine Klebrigkeit auf, die es ermöglicht, mehrere Vorrichtungen der vorgenannten Art zu einem Verbund zusammen zu kleben. Es gelingt so, durch die Kombination mehrerer
Vorrichtungen die Wirkintensität und -dauer auf einfache Art und Weise signifikant zu beeinflussen. Außerdem können so mehrere Vorrichtungen, die mit unterschiedlichen Pheromonen beladen sind, zu einem Dispenser verbunden werden. Eine derartige vergleichbar einfache Variation und Kombination von Pheromonen in einem einzigen Verbund als Dispenser ist bisher noch nicht realisiert worden.
Um die Klebrigkeit der Kautschukmatrix gezielt einzustellen, basiert die Kautschukmatrix auf zumindest zwei verschiedenen Kautschuken mit unterschiedlichen Mooney- Viskositäten. So ist es beispielsweise möglich zwei Kautschuke zu verwenden, wobei der erste eine Mooney- Viskosität von 45 MLi+4(100 °C) und der zweite eine Mooney- Viskosität von 90 MLi+ (100 °C) aufweist. Für stark klebende Systeme werden dann der Kautschuk mit der Mooney- Viskosität von 45 MLi+ (100 °C) und der Kautschuk mit der Mooney- Viskosität von 90 beispielsweise im Verhältnis von 3 : 1 eingesetzt. Für weniger stark klebende Vorrichtungen kann das Verhältnis umgekehrt werden.
Die Vorrichtung zur kontrollierten Abgabe von Pheromonen kann bis zu 25 Gew.-% zumindest eines inerten hellen Füllstoffes enthalten. Damit lassen sich die Festigkeit und die Klebrigkeit der Vorrichtung steuern. Bei dem inerten hellen Füllstoff kann es sich beispielsweise um gefällte Kieselsäure (amorphes Si02), Kreide (CaC03) oder Talkum (Magnesiumsilikat) handeln.
Die Mooney- Viskosität und damit die Klebrigkeit der Kautschukmatrix kann gemäß einer vorteilhaften Weiterbildung der Erfindung auch über die Vernetzung der Kautschukmatrix gesteuert werden. So kann z. B. zur Reduzierung der Klebrigkeit bzw. Erhöhung der Festigkeit ein vernetzendes Harzsystem wie Vulkadur® A eingesetzt werden. Die Kautschukmatrix kann außerdem weitere Zuschlagstoffe wie Trockenmittel
(Molekularsiebe, Calciumoxid) oder Weißpigmente (Titandioxid in Rutil- oder
Anatasmodifikation) enthalten.
Die genannten Zuschlagstoffe der Kautschukmatrix beeinträchtigen überraschenderweise die kontinuierliche Freigabe der Pheromone aus der Vorrichtung nicht.
Als Trägermaterial für das Pheromon können z. B. Silica-Gele (Kieselgele) eingesetzt werden. Bevorzug ist der Einsatz von Molekularsieben als Trägermaterial. Diese haben sich hinsichtlich der Aufnahme und späteren Abgabe der Pheromone als besonders effektiv herausgestellt. Ihre Wirkweise beruht vermutlich darauf, dass die Pheromone gleichmäßig im Verlauf der Fangdauer im Molekularsieb durch Wassermoleküle ausgetauscht werden. Als besonders geeignete Molekular siebe haben sich solche mit der allgemeinen Formel Mi/nO-AliC xSiC yFFiC) mit M = Alkali-, Erdalkali-Ionen, n = Kationenwertigkeit, x = 1,8 bis 12, y = 0 bis 300 herausgestellt. Typische Porenweiten von Molekular sieben sind 3, 4, 5, 10 und 13 Angstrom, wobei eine Porenweite von 5 bis 15 Angstrom, speziell 8 bis 3 Angstrom, bevorzugt ist. Die Molekularsiebe können in Kugelform oder in Pulverform eingesetzt werden, wobei die Pulverform bevorzugt ist.
Gemäß einer vorteilhaften Weiterbildung der Erfindung weist die Kautschukmatrix bis zu 10 Gew.-% zumindest eines Indikators auf Trocknungsmittel auf, der nach Aufnahme von Wassermolekülen einen Farbumschlag zeigt. Dadurch wird es möglich, den Verlauf der Pheromonfrei setzung und insbesondere das Ende der Abgabe von außen sichtbar zu machen. Die Farbindikatoren zeigen dabei zunächst eine Farbänderung an der Oberfläche und im weiteren Verlauf einen Farbumschlag in der gesamten Vorrichtung an. Der Abgabestatus an Pheromon wird dadurch von außen gut sichtbar. Dies bewahrt den Anwender vor einem unnötigen zu frühen Austausch und damit unnötigen Kosten. Als Indikatoren können übliche Farbindikatoren, die auf Wasser reagieren, eingesetzt werden, beispielsweise CuS04 wasserfrei, Co(II)Cl2, H4Fe(S04)2. Diese sind auf ein
Trocknungsmittel, wie Kieselgel, aufgebracht.
Für eine optimale Pheromonfrei Setzung, insbesondere bei Pheromonen für schädigende Insekten, hat es sich als vorteilhaft erwiesen, wenn die Materialdichte der
erfindungsgemäßen Vorrichtung zwischen 0,95 und 1,40 g/cm3 liegt.
Vorzugsweise werden durch das in der erfindungsgemäßen Vorrichtung vorhandene Pheromon bzw. die vorhandenen Pheromone schädigende Insekten angelockt. Diese können dann in geeigneten Fangeinrichtungen arretiert werden und ermöglichen so eine umweltfreundliche Bekämpfung von Schadinsekten.
Geeignete Pheromone sind beispielsweise bekannt aus T.D. Wyatt,„Pheromones and Animal Behaviour: Communication by Smell and Taste" Cambridge 2003 : Cambridge University Press. Beispiele für Pheromone umfassn flüchtige Alkanole und Alkenole mit 5 bis 10 C-Atomen, Alkanone mit 6 bis 10 C-Atomen, 1,7-Dioxaspirononan, 3- oder 4- Hydroxy-l,7-dioxaspiroundecan, Benzylalkohol, Z(9)Tricosene (Muscalure), Heneicosene, Diacetyl, Alkansäuren mit 5 bis 10 C-Atomen, wie Caprylsäure, Laurylsäure, oc-Pinen, Methyleugenol, Ethyldodecanoat, tert-Butyl 4-(oder 5-)chloro-2-ethylcyclohexan- carboxylat, Mycrenon, Cucurbitacin, Trimedlure (kommerziell erhältlich als Capilure®), und (E,E)-8,10-Dodecadien-l-ol (Codlemone), cis-Verbenol, Ipsdienol, 2-Methylbut-3-en- 2-ol. Mischungen von Pheromonen sind ebenfalls geeignet.
Die erfindungsgemäßen Vorrichtungen aus Kautschukmatrix mit Trägermaterial, welches mit Pheromonen beladen ist, können in ihrer Form unterschiedlich ausgebildet sein. So können sie beispielsweise die Form von Kugeln haben. Vorzugsweise sind die
Vorrichtungen jedoch in Form von Platten einer Stärke von 0,5 bis 2 cm und Kantenlängen von 2 bis 15 cm ausgebildet. Diese lassen sich gut untereinander verbinden und können einfach in geeigneten Fangeinrichtungen platziert werden. Die erfindungsgemäßen Vorrichtungen zur kontrollierten Abgabe von Pheromonen mit einer Kautschukmatrix, die zumindest auf einem Kautschuk mit einer Mooney- Viskosität von 45 bis 90 MLi+4(100 °C) basiert, können in vorteilhafter Weise zu einem Verbund zusammengeführt werden. Dadurch, dass die Kautschukmatrix eine Klebrigkeit aufweist, ist eine Anpassung des Oberflächen/Volumenverhältnisses über ein Aneinanderkleben
(Huckepack) von mehreren Vorrichtungen, insbesondere in Plattenform, möglich. Dadurch kann eine variable Wirkdauer einfach eingestellt werden. Es ist auch möglich,
Vorrichtungen, die mit unterschiedlichen Pheromonen beladen sind, zu kombinieren. Der Verbund stellt eine sehr einfach und praktisch gut umsetzbare Lösung zu einer mannigfaltigen Variation und Kombination von Pheromonen in einem Verbund zur Verfügung.
Sowohl die erfindungsgemäßen Vorrichtungen als auch der Verbund aus mehreren Vorrichtungen wird vorzugsweise in Fallen zur Arretierung von schädigenden Insekten eingesetzt.
Der Begriff schädigende Insekten (auch Schadinsekten genannt) umfasst erfindungsgemäß neben Insekten im eigentlichen Sinne auch schädliche, insbesondere als Vektor für die Übertragung von Krankheiten verantwortliche Spinnentiere (Arachnida). Beispiele für Schadinsekten sind Insekten (Insecta) aus den Ordnungen Diptera,
Siphonaptera, Blattaria, Blattodea, Dermaptera, Hemiptera, Hymenoptera, Orthoptera, Isoptera, Thysanura, Phthiaraptera, Araneida, Lepidoptera, Coleoptera und Acarina, sowie den Klassen Chilopoda und Diplopoda. Bevorzugt sind Schadinsekten der Ordnung Diptera, Hemiptera, Hymenoptera, Acarina, Lepidoptera, Coleoptera und Siphonaptera. Ganz besonders bevorzugt sind Schadinsekten der Ordnung Lepidoptera und Coleoptera.
Beispiele für Schadinsekten sind:
Insekten der Ordnung Lepidoptera, wie Agrotis ypsilon, Agrotis segetum, Alabama argillacea, Anticarsia gemmatalis, Argyresthia conjugella, Autographa gamma, Bupalus piniarius, Cacoecia murinana, Cameraria ohridella, Capua reticulana, Cheimatobia brumata, Choristoneura fumiferana, Choristoneura occidentalis, Cirphis unipuncta, Cydia pomonella, Dendrolimus pini, Diaphania nitidalis, Diatraea grandiosella, Earias insulana, Elasmopalpus lignosellus, Estigmene acrea, Eupoecilia ambiguella, Evetria bouliana, Feltia subterranea, Galleria mellonella, Grapholitha funebrana, Grapholitha molesta, Heliothis armiger a, Heliothis virescens, Heliothis zea, Hellula undalis, Hibernia defoliaria, Hyphantria cunea, Hyponomeuta malinellus, Keiferia lycopersicella, Lambdina fiscellaria, Laphygma exigua, Leucoptera coffeella, Leucoptera scitella, Lithocolletis blancardella, Lobesia botrana, Loxostege sticticalis, Lymantria dispar, Lymantria monacha, Lyonetia clerkella, Malacosoma neustria, Mamestra brassicae, Orgyia pseudotsugata, Ostrinia nubilalis, Panolis flammea, Pectinophora gossypiella, Peridroma saucia, Phalera bucephala, Phthorimaea operculella, Phyllocnistis citrella, Pieris brassicae, Plathypena scabra, Plutella xylostella, Pseudoplusia includens, Rhyacionia frustrana, Scrobipalpula absoluta, Sitotroga cerealella, Sparganothis pilleriana,
Spodoptera frugiperda, Spodoptera littoralis, Spodoptera litura, Thaumatopoea
pityocampa, Thaumatopoea processionea; Tortrix viridana, Trichoplusia ni und
Zeiraphera canadensis.
Käfer (Coleoptera), wie Agrilus sinuatus, Agrilus viridis, Agrilus bigutattus, Agrilus planipennis, Agriotes lineatus, Agriotes obscurus, Amphimallus solstitialis, Anisandrus dispar, Anoplophora glabripennis, Anoplphora chinensis, Anoplpophora sp.., Anthonomus grandis, Anthonomus pomorum, Aphthona euphoridae, Athous haemorrhoidalis, Atomaria linearis, Blastophagus piniperda, Blitophaga undata, Bruchus rufimanus, Bruchus pisorum, Bruchus lentis, Byctiscus betulae, Cassida nebulosa, Cerotoma trifurcata, Cetonia aurata, Ceuthorrhynchus assimilis, Ceuthorrhynchus napi, Chaetocnema tibialis, Conoderus vespertinus, Cr iocer is asparagi, Ctenicera ssp., Diabrotica longicornis, Diabrotica semipunctata, Diabrotica 12-punctata Diabrotica speciosa, Diabrotica virgifera, Epilachna varivestis, Epitrix hirtipennis, Eutinobothrus brasiliensis, Hylobius abietis, Hypera brunneipennis, Hypera postica, Ips typographus, Lema bilineata, Lema melanopus, Leptinotarsa decemlineata, Limonius californicus, Lissorhoptrus oryzophilus, Melanotus communis, Meligethes aeneus, Melolontha hippocastani, Melolontha melolontha, Oulema oryzae, Ortiorrhynchus sulcatus, Otiorrhynchus ovatus, Phaedon cochleariae, Phyllobius pyri, Phyllotreta chrysocephala, Phyllophaga sp., Phyllopertha horticola, Phyllotreta nemorum, Phyllotreta striolata, Popillia japonica, Sitona lineatus und Sitophilus granaria,
Fliegen, Moskitos (Diptera), wie Aedes aegypti, Aedes albopictus, Aedes vexans,
Anastrepha ludens, Anopheles maculipennis, Anopheles crucians, Anopheles albimanus, Anopheles gambiae, Anopheles freebornt, Anopheles leucosphyrus, Anopheles minimus, Anopheles quadrimaculatus, Calliphora vicina, Ceratitis capitata, Chrysomya bezziana, Chrysomya hominivorax, Chrysomya macellaria, Chrysops discalis, Chrysops silacea, Chrysops atlanticus, Cochliomyia hominivorax, Contarinia sorghicola Cordylobia anthropophaga, Culicoides furens, Culex pipiens, Culex nigripalpus, Culex
quinquefasciatus, Culex tarsalis, Culiseta inornata, Culiseta melanura, Dacus Cucurbitae, Dacus oleae, Dasineura brassicae, Delia antique, Delia coarctata, Delia platura, Delia radicum, Dermatobia hominis, Fannia canicularis, Geomyza Tripunctata, Gasterophilus intestinalis, Glossina morsitans, Glossina palpalis, Glossina fuscipes, Glossina tachinoides, Haematobia irritans, Haplodiplosis equestris, Hippe lates spp., Hylemyia platura, Hypoderma lineata, Leptoconops torrens, Liriomyza sativae, Liriomyza trifolii, Lucilla caprina, Lucilla cuprina, Lucilla sericata, Lycoria pectoralis, Mansonia titillanus, Mayetiola destructor, Musca domestica, Muscina stabulans, Oestrus ovis, Opomyza florum, Oscinella frit, Pegomya hysocyami, Phorbia antiqua, Phorbia brassicae, Phorbia coarctata, Phlebotomus argentipes, Psorophora columbiae, Psila rosae, Psorophora discolor, Prosimulium mixtum, Rhagoletis cerasi, Rhagoletis pomonella, Sarcophaga haemorrhoidalis, Sarcophaga sp., Simulium vittatum, Stomoxys calcitrans, Tabanus bovinus, Tabanus atratus, Tabanus lineola, und Tabanus similis, Tipula oleracea, und Tipula paludosa
Fransenflüger (Thysanoptera), wie Dichromothrips corbetti, Dichromothrips ssp,
Frankliniella fusca, Frankliniella occidentalis, Frankliniella tritici, Scirtothrips citri, Thrips oryzae, Thrips palmi und Thrips tabaci, Termiten (Isoptera), wie Calotermes flavicollis, Leucotermes flavipes, Heterotermes aureus, Reticulitermes flavipes, Reticulitermes virginicus, Reticulitermes lucifugus, Termes natalensis, and Coptotermes formosanus, Schaben (Blattaria - Blattodea), wie. Blattella germanica, Blattella asahinae, Periplaneta americana, Periplaneta japonica, Periplaneta brunnea, Periplaneta fuligginosa,
Periplaneta australasiae, und Blatta orientalis; echte Käfer (Hemiptera einschließlich Homoptera), wie Acrosternum hilare, Blissus leucopterus, Cyrtopeltis notatus, Dysdercus cingulatus, Dysdercus intermedius, Eurygaster integriceps, Euschistus impictiventris, Leptoglossus phyllopus, Lygus lineolaris, Lygus pratensis, Nezara viridula, Piesma quadrata, Solubea insularis , Thyanta perditor, Acyrthosiphon onobrychis, Adelges laricis, Aphidula nasturtii, Aphis fabae, Aphis forbesi, Aphis pomi, Aphis gossypii, Aphis grossulariae, Aphis schneiden, Aphis spiraecola, Aphis sambuci, Acyrthosiphon pisum, Aulacorthum solani, Bemisia argentifolii, Brachycaudus cardui, Brachycaudus helichrysi, Brachycaudus persicae, Brachycaudus prunicola, Brevicoryne brassicae, Capitophorus horni, Cerosipha gossypii, Chaetosiphon fragaefolii, Cryptomyzus ribis, Dreyfusia nordmannianae, Dreyfusia piceae, Dysaphis radicola, Dysaulacorthum pseudosolani, Dysaphis plantaginea, Dysaphis pyri, Empoasca fabae, Hyalopterus pruni, Hyperomyzus lactucae, Macrosiphum avenae, Macrosiphum euphorbiae, Macrosiphon rosae, Megoura viciae, Melanaphis pyrarius, Metopolophium dirhodum, Myzus persicae, Myzus ascalonicus, Myzus cerasi, Myzus varians, Nasonovia ribis-nigri, Nilaparvata lugens, Pemphigus bursarius, Perkinsiella saccharicida, Phorodon humuli, Psylla mali, Psylla piri, Rhopalomyzus ascalonicus, Rhopalosiphum maidis, Rhopalosiphum padi, Rhopalosiphum insertum, Sappaphis mala, Sappaphis mali,
Schizaphis graminum, Schizoneura lanuginosa, Sitobion avenae, Trialeurodes
vaporariorum, Toxoptera aurantiiand, Viteus vitifolii, Cimex lectularius, Cimex hemipterus, Reduvius senilis, Triatoma spp., und Arilus critatus. Ameisen, Bienen, Wespen, Pflanzenwespen (Hymenoptera), wie Athalia rosae, Atta cephalotes, Atta capiguara, Atta cephalotes, Atta laevigata, Atta robusta, Atta sexdens, Atta texana, Crematogaster spp., Hoplocampa minuta, Hoplocampa testudinea,
Monomorium pharaonis, Solenopsis geminata, Solenopsis invicta, Solenopsis richteri, Solenopsis xyloni, Pogonomyrmex barbatus, Pogonomyrmex californicus, Pheidole megacephala, Dasymutilla occidentalis, Bombus spp. Vespula squamosa, Paravespula vulgaris, Paravespula pennsylvanica, Paravespula germanica, Dolichovespula maculata, Vespa crabro, Polistes rubiginosa, Camponotus floridanus, und Linepithema humile,
Grillen, Grashüpfer, Heuschrecken (Orthoptera), wie Acheta domestica, Gryllotalpa gryllotalpa, Locusta migratoria, Melanoplus bivittatus, Melanoplus femurrubrum, Melanoplus mexicanus, Melanoplus sanguinipes, Melanoplus spretus, Nomadacris septemfasciata, Schistocerca americana, Schistocerca gregaria, Dociostaurus
maroccanus, Tachycines asynamorus, Oedaleus senegalensis, Zonozerus variegatus, Hieroglyphus daganensis, Kraussaria angulifera, Calliptamus italicus, Chortoicetes terminifera, und Locustana pardalina,
Arachnoidea, wie arachnids (Acarina), beispielsweise die Familien Argasidae, Ixodidae und Sarcoptidae, wie Amblyomma americanum, Amblyomma variegatum, Ambryomma maculatum, Argas persicus, Boophilus annulatus, Boophilus decoloratus, Boophilus microplus, Dermacentor silvarum, Dermacentor andersoni, Dermacentor variabilis, Hyalomma truncatum, Ixodes ricinus, Ixodes rubicundus, Ixodes scapularis, Ixodes holocyclus, Ixodes pacificus, Ornithodorus moubata, Ornithodorus hermsi, Ornithodorus turicata, Ornithonyssus bacoti, Otobius megnini, Dermanyssus gallinae, Psoroptes ovis, Rhipicephalus sanguineus, Rhipicephalus appendiculatus, Rhipicephalus evertsi, Sarcoptes scabiei, und Eriophyidae spp. wie Aculus schlechtendali, Phyllocoptrata oleivora and Eriophyes sheldoni; Tarsonemidae spp. wie Phytonemus pallidus und
Polyphagotarsonemus latus; Tenuipalpidae spp. wie Brevipalpus phoenicis; Tetranychidae spp. wie Tetranychus cinnabarinus, Tetranychus kanzawai, Tetranychus pacificus, Tetranychus telarius w Tetranychus urticae, Panonychus ulmi, Panonychus citri, und Oligonychus pratensis; Araneida, e.g. Latrodectus mactans, und Loxosceles reclusa, Flöhe (Siphonaptera), wie Ctenocephalides felis, Ctenocephalides canis, Xenopsylla cheopis, Pulex irritans, Tunga penetrans, und Nosopsyllus fasciatus,
Silberfische, Ofenfischchen (Thysanura), wie Lepisma saccharina und Thermobia domestica,
Hundertfüßer (Chilopoda), wie Scutigera coleoptrata,
Tausendfüßer (Diplopoda), wie Narceus spp.,
Ohrenkriecher (Dermapteraj, wie forfwula auricularia,
Läuse (Phthiraptera), wie Pediculus humanus capitis, Pediculus humanus corporis, Pthirus pubis, Haematopinus eurysternus, Haematopinus suis, Linognathus vituli, Bovicola bovis, Menopon gallinae, Menacanthus stramineus and Solenopotes capillatus,
Nematoden wie Heterodera glycines, H. avenae, H. schachtii, H. trifolii, H. gottingiana, H. cajani, H. zeae, Globoder a rostochiensis, G pallida, G tabacum. , Meloidogyne arenaria, M. incognita, M. javanica, M. hapla, M. chitwoodi, Ditylenchus destructor, D. dipsaci, D. angustus, Anguina tritici, A. agrostis, Afrina/Anguina wevelli, Pratylenchus penetrans, P. brachyurus, P. coffeae, P. zeae, P. goodeyi, P. thornei, P. vulnus,
Radopholus similis, Hirschmanniella oryzae, H. mucronata, H. spinicauda, Hoplolaimus columbus, H. seinhorsti, H. indicus, Rotylenchulus reniformis, Tylenchulus semipenetrans, Helicotylenchus multicinctus, H. multicinctus, H. mucronatus, H. dihystera, H.
pseudorobustus, Criconemella C. xenoplax axestis, C. spharocephalum.
In einer bevorzugten Ausführungsform sind Schadinsekten der Ordnung Lepidoptera solche der Familie Gracillariidae, speziell die Unterfamilien Thaumetopoeinae, Cossinae, Zeuzerinae, Larentinae, Ennominae. Besonders bevorzugte Schadinsekten der Ordnung Lepidoptera sind Eichenprozessionsspinner (Thaumetopoea processionea),
Pinienprozessionsspinner (Thaumetopoea pityocampa), Weidenbohrer (Cossus cossus), Blausieb (Zeuzera pyrina), Schwammspinner (Lymantria dispar),
Rosskastanienminiermotte (Cameraria ohridella), Eichenwickler (Tortrix viridana), Kleiner Frostspanner (Operophtera brumata), und Großer Frostspanner (Erannis defoliaria). In einer bevorzugten Ausführungsform sind Schadinsekten der Ordnung Coleoptera solche der Familie Curculionidae, Bupraestoidae, Cerambycidae, Scarabaeidae, und Hemiptera, speziell die Unterfamilien Scolytinae, Molytinae, Rhynchophorinae, Agrilinae;
Buprestinae, Lamiinae, Melonthinae und Tinginae. Besonders bevorzugte Schadinsekten der Ordnung Coleoptera sind Buchdrucker (Ips typographus) , Eichensplintkäfer (Scolytus intricatus), Große Ulmensplintkäfer (Scolytus scolytus), Kupferstecher (Pityogenes chalcographus), Riesenbastkäfer (Dentroctonus micans), Bergkiefernkäfer (Dendroctonus ponderosae), Großer Brauner Rüsselkäfer (Hylobius abietis), Grünrüssler (Phyllobius spec), Palmenrüsselkäfer (Rhynchophorus ferrugineus), Buchenprachtkäfer (Agrilus viridis), Laubholzprachtkäfer (Agrilus spec), Wellenbindiger Eichenprachtkäfer
(Coraebus undatus), Pappelbock (Saperda spec), Asiatischer Laubholzbockkäfer
(Anoplophora glabripennis), Zitrusbockkäfer (Anopolophora chinensis), Eichenbock (Cerambyx cerdo), Bäckerbock (Monochamus galloprovincialis), Nadelholzböcke
(Monochamus spec), Waldmaikäfer (Melolontha hippocastani), Feldmaikäfer (Melolontha melolontha), Platanennetzwanze (Corythucha ciliata).
Speziell bevorzugte Schadinsekten sind Buchdrucker (Ips typographus).
Anhand von Ausführungsbeispielen soll die Erfindung näher erläutert werden, ohne auf diese Beispiele beschränkt zu sein. Vergleichsbeispiel A
Als Vergleich wurde ein kommerziell erhältlicher Pheromondispenser eingesetzt
(Pheroprax Ampulle, BASF SE). Diese Kunststoffampulle (verpackt in einer
Aluminiumfolie) mit zwei Kammern enthält 3,0 g artspezifischen Lockstoff des
Buchdruckers (Ips typographus) (3,56 Gew.% cis-Verbenol, 0,36 Gew.% Ipsdienol und 96,08 Gew.%) 2-Methylbut-3-en-2-ol). Die Wirkungsweise der Ampulle lässt sich mit der Funktion eines sehr feinporigen Schwammes vergleichen. Bei geöffneter Verpackung läuft folgender Vorgang ab: Das Kunststoffmaterial der Ampulle saugt die flüssigen
Locksubstanzen auf und gibt diese in Abhängigkeit von der Umgebungstemperatur über die gesamte Ampullenoberfläche nach außen ab bis der Inhalt erschöpft ist. Herstellung der Vorrichtungen B bis D (erfindungsgemäß)
Variante B
Die Pheromonmischung zum Anlocken des Buchdruckers (3,56 Gew.% cis-Verbenol, 0,36 Gew.% Ipsdienol und 96,08 Gew.% 2-Methylbut-3-en-2-ol) und ein Molekular sieb des Typs Sylosiv® A10 (Porenweite 1 nm) der Firma W. R. Grace & Co., USA, wurden in einem Gewichtsverhältnis von 50:67 bei -40 °C miteinander vermischt. 117 g dieses nun mit Pheromon beladenen Molekularsiebs wurden in einem Mischer mit 857, 1 g
Naturkautschuk (Crepe 1) mit einer Mooney- Viskosität von 70 - 90 ML 1+4(100 °C) (Markenname oder Quelle), 25,7 g Titandioxid als Weißpigment, 17, 1 g CaO als
Trockenmittel und 25 g CuS04 (wasserfrei) als Farbindikator gemischt, extrudiert und zu Platten mit einem Gewicht von 52,1 g entsprechend einer Menge von 2,5 g
Pheromonmischung pro Platte geschnitten. Die Platten sind nach der Herstellung und vor der Verwendung vor Feuchtigkeit und Pheromonverlust z. B. durch ein sofortiges
Verpacken in Aluminiumfolie zu schützen. Die Tabelle 1 gibt die Zusammensetzung für die Vorrichtung B sowie mögliche
Zusammensetzungen mit hohem oder niedrigem Füll Stoff anteil und auch ohne Indikator wieder, wobei die Angaben in Gew.-% bezogen auf die gesamte Kautschukmischung angegeben sind. Die unterschiedlichen Füllgrade ermöglichen dabei die Einstellung unterschiedlicher Dichten. Tabelle 1
Figure imgf000015_0001
a) CaO
b) Sylosiv® A10 der Firma W. R. Grace & Co., USA
c) Pheromonmi schung zum Anlocken des Buchdruckers (3,56 Gew.% cis-Verbenol, 0,36 Gew.% Ipsdienol und 96,08 Gew.% 2-Methylbut-3-en-2-ol)
d) CuS04, wasserfrei
Alternativ kann die Menge an Pheromon und Molekularsieb je Mischungsansatz auch erhöht, z. B. verdoppelt, werden, um bei gleicher Pheromonmenge ein geringeres Vorrichtungsgewicht zu erzielen.
Varianten C und D
Die Vorrichtungen aus Variante B wurden zweifach (Variante C) oder dreifach (Variante D) aufeinandergeklebt, so dass die Pheromonmenge je Verbund 5,0 g bzw. 7,5 g betrug.
Mit dem Vergleichsdispenser A und den Vorrichtungen B bis D wurden die im Folgenden beschriebenen Freilandversuche durchgeführt: Biologische Testung an Standort A
Die biologische Testung wurde im Revier Heimburg im Harz (ein Mittelgebirge in Deutschland, 480 m über Meereshöhe) an 80-90 Jahre alten Fichten durchgeführt. Der Standort war gekennzeichnet durch starke Windwürfe und Brüche durch den Sturm "Kyrill" vom 18./19. Januar 2007. Der Vergleichsdispenser A und den Vorrichtungen B bis D wurden am 26. April 2007 als Köder in Theyson -Schlitzfallen ausgehängt und vom 9.Mai bis 6. September 2007 ausgewertet. An neun verschiedenen Terminen wurde die Anzahl Buckdrucker in den Fallen ausgezählt (Tabelle 2). Tabelle 2: Anzahl der Buchdrucker in den Fallen
Figure imgf000016_0001
In Tabelle 2 wurden die Gesamtsummen über alle neun Zählungen der gefangenen Buckdrucker gebildet, wobei die Summe für Variante A auf 100 % gesetzt wurde. Der Vergleich von A (3,0 g Pheromon) und B (2,5 g Pheromon) zeigte, dass die
Pheromonabgabe bei B trotz geringerer Pheromonmenge über einen längeren Zeitraum erfolgt. Insbesondere in der zweiten Hälfte der Anwendung zeichnen sich die
erfindungsgemäßen Varianten B bis D durch eine deutlich höhere Fängigkeit aus, so wurden beispielsweise im Zeitraum vom 10.07. bis zum 06.09. durch die herkömmliche Pheromonampulle nur noch 143 Buchdrucker arretiert, während durch die
erfindungsgemäßen Vorrichtungen mit 2,5 g Pheromonen noch 384 Buchdrucker, mit 5 g Pheromonen 1118 Buchdrucker und mit 7,5 g Pheromonen sogar 1781 Buchdrucker arretiert wurden.
Varianten C und D zeigten, dass durch Kombination von zwei oder drei einzelnen Vorrichtungen eine noch längere Wirkungsdauer erreicht werden kann. Während der handelsübliche Dispenser A während der Saison alle 6-8 Wochen gewechselt werden sollten, war mit den erfindungsgemäßen Vorrichtungen eine einzige Anwendung pro Saison ausreichend.
Biologische Testung an Standort B
Die biologische Testung wurde im Revier Blankenburg im Harz (ein Mittelgebirge in Deutschland, 400 m über Meereshöhe) an 80-90 Jahre alten Fichten durchgeführt. Der Standort war gekennzeichnet durch starke Windwürfe und Brüche durch den Sturm "Kyrill" vom 18./19. Januar 2007. Die Durchführung wurde analog der Testung am Standort A mit den Varianten B bis D durchgeführt. Die Ergebnisse sind in Tabelle 3 zusammengefasst.
Tabelle 3: Anzahl der Buchdrucker in den Fallen
Figure imgf000017_0001
Es wurde gezeigt, dass sich durch das Aneinanderkleben der einfachen Vorrichtung B mit jeweils 2,5 g Lockstoff zu zwei (C) oder drei (D) Lagen die Fängigkeit und Wirkungsdauer steuern lassen.
Auch über den gesamten Zeitraum wurden im Vergleich zum einfachen Variante B (100 %) beim Verbund C aus zwei einfachen Vorrichtungen 115 % und beim dreifachen Verbund D 133 % arretiert. Das sog. Huckepack-System steigerte also gegenüber der einfachen Variante B sowohl die Fängigkeit insgesamt als auch die Wirkungsdauer ab Juni- September.

Claims

Patentansprüche
1. Vorrichtung zur kontrollierten Abgabe von Pheromonen aus einer Kautschukmatrix, in die ein Trägermaterial, das mit Pheromonen beladen ist, eingearbeitet ist, wobei die Beladungsmenge aller Pheromone in Bezug auf die Gesamtmenge aus Trägermaterial und Pheromon 20 bis 60 Gew.-% beträgt, dadurch gekennzeichnet, dass das
Massenverhältnis von Kautschukmatrix zu Trägermaterial mit Pheromon 1 : 0,1 bis 1 : 0,18 beträgt.
2. Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass die Kautschukmatrix auf zumindest einem Kautschuk mit einer Mooney- Viskosität von 45 bis 90
MLi+4(100 °C) basiert.
3. Vorrichtung nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Kautschukmatrix auf zumindest zwei verschiedenen Kautschuken mit unterschiedlichen Mooney- Viskositäten basiert.
4. Vorrichtung nach zumindest einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch
gekennzeichnet, dass die Vorrichtung bis zu 25 Gew.-% zumindest eines inerten hellen Füllstoffs enthält.
5. Vorrichtung nach zumindest einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch
gekennzeichnet, dass die Mooney- Viskosität über die Vernetzung der
Kautschukmatrix gesteuert wird.
6. Vorrichtung nach zumindest einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch
gekennzeichnet, dass das Trägermaterial ein Molekularsieb ist.
7. Vorrichtung nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, dass das Molekularsieb die allgemeine Formel Mi/nO-AliC xSiC yFFiC) mit M = Alkali-, Erdalkali-Ionen, n = Kationen Wertigkeit, x = 1,8 bis 12, y = 0 bis 300 aufweist.
8. Vorrichtung nach zumindest einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Kautschukmatrix bis zu 10 Gew.-% zumindest eines Indikators auf Trocknungsmittel aufweist, der nach Aufnahme von Wassermolekülen einen Farbumschlag zeigt.
9. Vorrichtung nach zumindest einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch
gekennzeichnet, dass die Material dichte zwischen 0,95 und 1,40 g/cm3 liegt.
10. Vorrichtung nach zumindest einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch
gekennzeichnet, dass Pheromon schädigende Insekten anlockt.
11. Verbund aus mehreren Vorrichtungen gemäß Anspruch 2 bis 10 zum Anlocken von schädigenden Insekten.
12. Verwendung der Vorrichtung gemäß Anspruch 1 in Fallen zur Arretierung von
schädigenden Insekten.
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