WO2011118682A1 - Ngfに対するアプタマー及びその使用 - Google Patents

Ngfに対するアプタマー及びその使用 Download PDF

Info

Publication number
WO2011118682A1
WO2011118682A1 PCT/JP2011/057105 JP2011057105W WO2011118682A1 WO 2011118682 A1 WO2011118682 A1 WO 2011118682A1 JP 2011057105 W JP2011057105 W JP 2011057105W WO 2011118682 A1 WO2011118682 A1 WO 2011118682A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
aptamer
ngf
group
nucleotide
nucleic acid
Prior art date
Application number
PCT/JP2011/057105
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
義一 中村
玲 金
久尚 平松
Original Assignee
株式会社リボミック
塩野義製薬株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority to EP11759487.9A priority Critical patent/EP2551346B1/en
Priority to JP2012504603A priority patent/JP5027956B2/ja
Priority to CN201180015552.4A priority patent/CN102844436B/zh
Priority to SI201130783A priority patent/SI2551346T1/sl
Application filed by 株式会社リボミック, 塩野義製薬株式会社 filed Critical 株式会社リボミック
Priority to KR1020127027569A priority patent/KR101806429B1/ko
Priority to PL11759487T priority patent/PL2551346T3/pl
Priority to ES11759487.9T priority patent/ES2567270T3/es
Priority to CA2794199A priority patent/CA2794199C/en
Priority to AU2011230388A priority patent/AU2011230388B2/en
Priority to US13/636,974 priority patent/US9175292B2/en
Priority to BR112012024232A priority patent/BR112012024232A8/pt
Priority to IN3036KON2012 priority patent/IN2012KN03036A/en
Priority to DK11759487.9T priority patent/DK2551346T3/en
Publication of WO2011118682A1 publication Critical patent/WO2011118682A1/ja
Priority to HRP20160378TT priority patent/HRP20160378T1/hr

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/115Aptamers, i.e. nucleic acids binding a target molecule specifically and with high affinity without hybridising therewith ; Nucleic acids binding to non-nucleic acids, e.g. aptamers
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/7088Compounds having three or more nucleosides or nucleotides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • A61P25/04Centrally acting analgesics, e.g. opioids
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P29/00Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10Type of nucleic acid
    • C12N2310/16Aptamers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/30Chemical structure
    • C12N2310/35Nature of the modification
    • C12N2310/351Conjugate
    • C12N2310/3515Lipophilic moiety, e.g. cholesterol

Definitions

  • the present invention relates to an aptamer for NGF and a method for using the aptamer.
  • Nerve growth factor NGF nerve growth factor
  • nerve growth factor NGF nerve growth factor
  • TrkA As the NGF receptor, a high-affinity tyrosine kinase receptor TrkA and a low-affinity tumor necrosis factor receptor superfamily are known. These receptors act as homodimers or heterodimers and are deeply involved in the development and maintenance of the nervous system. TrkA is a single transmembrane receptor and has a tyrosine kinase structure in the intracellular domain. When NGF binds, tyrosine phosphorylation occurs and a signal is transmitted downstream, which promotes cell differentiation and sustains survival. TrkB and TrkC are known as TrkA family receptors. TrkB binds to BDNF and NT-4 / 5, and TrkC binds to NT-3.
  • p75 has a lower ligand specificity than TrkA and binds to BDNF, NT-3, and NT-4 / 5 in addition to NGF.
  • p75 is a single-transmembrane receptor, but there is no tyrosine kinase domain on the cytoplasm side. Like TrkA, it is expressed not only in neurons but also in non-neurons. In addition to being involved in promoting cell differentiation and maintaining survival, this receptor is known to be involved in the induction of apoptosis and cell migration. From the results of crystal structure analysis, it was suggested that homodimeric NGF binds to TrkA at 2: 2, but binds to p75 at 2: 1. Homodimeric NGF may also bind to the TrkA and p75 heterodimers.
  • NGF is produced by Schwann cells, keratinocytes, bronchial epithelial cells, fibroblasts, T lymphocytes, macrophages, mast cells, B lymphocytes, keratinocytes, smooth muscle cells, renal glomerular cells, skeletal muscle cells, and the like.
  • TrkA is known to be expressed not only in neurons but also in monocytes other than neurons, T lymphocytes, B lymphocytes, and mast cells.
  • p75 is expressed not only in nerve cells but also in non-neuronal cells.
  • NGF plays an important role in the nervous system. It has been shown to have an effect of maintaining the survival of cholinergic neurons, and is considered to have some relation to Alzheimer's disease. In addition, when NGF is administered into the brain of aged rats, improvement in memory impairment is observed, and therefore, it is also expected as a therapeutic agent for senile dementia.
  • NGF also acts on tissues and cells other than the nervous system and is involved in biological defense and tissue repair processes. For example, when NGF is administered to an animal, vascular permeability increases, T cell and B cell immune responses increase, lymphocyte differentiation induction, mast cell proliferation induction, and various cytokine release induction from mast cells occur. It is known.
  • NGF is associated with inflammation, and increased expression of NGF has been observed in patients with inflammatory diseases and inflammatory animal models. For example, systemic lupus erythematosus, multiple sclerosis, psoriasis, arthritis, interstitial cystitis, asthma and the like. It has been reported that the concentration of NGF in the synovial fluid of patients with rheumatoid arthritis is elevated. Further, it has been reported that NGF expression is improved in rheumatoid arthritis model rats, and that mast cells are increased and NGF expression is improved in arthritis model mice.
  • NGF is deeply related to pain.
  • deep pain such as myalgia continues for several days, resulting in hyperalgesia at the injection site.
  • NGF knockout mice and TrkA knockout mice lack a myelinated nerve and do not feel pain.
  • Intraperitoneal administration of 1 mg / kg NGF to adult rats results in nociceptive fever and hyperalgesia to mechanical stimulation.
  • NGF transgenic mice show hyperalgesia without inflammatory symptoms.
  • CIPA congenital indolent anhidrosis
  • NGF inhibitors can be used as therapeutic agents for pain such as nociceptive pain, inflammatory pain, neuropathic pain, cancer pain, fibromyalgia.
  • NGF antibody and NSAID combination therapy Patent Document 1
  • NGF antibody and opioid analgesic combination therapy Patent Document 2
  • post-surgical pain therapy using NGF antibody Patent Document 3
  • Patent Document 4 post-surgical pain therapy using NGF antibody
  • Patent Document 5 Bone cancer pain treatment using NGF antibody
  • Patent Document 6 have been reported.
  • Tanezumab PF-4383119 or RN624
  • Tanezumab is an antibody against NGF and has been shown to be effective in pain model experiments using osteoarthritis model animals, and is currently undergoing clinical trials.
  • the presence or absence of the inhibitory activity of NGF and an NGF receptor is unknown, there exists a report regarding natural RNA couple
  • RNA aptamers By the way, in recent years, attention has been focused on the application of RNA aptamers to therapeutic agents, diagnostic agents, and reagents, and some RNA aptamers have entered the clinical stage or practical application stage.
  • An RNA aptamer is an RNA that specifically binds to a target substance such as a protein, and can be prepared using SELEX (Systematic Evolution of Legends by Exponential Enrichment) (Patent Documents 7 to 9).
  • SELEX is a method of selecting RNA that specifically binds to a target substance from a pool of RNA having about 10 14 different nucleotide sequences.
  • the RNA used has a structure in which a random sequence of about 40 residues is sandwiched between primer sequences. This RNA pool is associated with the target substance, and only the RNA bound to the target substance is recovered using a filter or the like. The recovered RNA is amplified by RT-PCR and used as a template for the next round. By repeating this operation about 10 times, an RNA aptamer that specifically binds to the target substance may be obtained.
  • Aptamer drugs can target extracellular factors in the same way as antibody drugs, but there are possibilities in many respects that exceed antibody drugs in reference to many published academic papers. For example, aptamers often have higher binding power and specificity than antibodies. Moreover, it is hard to receive immune exclusion, and side effects such as antibody-specific antibody-dependent cytotoxicity (ADCC) and complement-dependent cytotoxicity (CDC) do not occur. From the viewpoint of delivery, since the aptamer is about 1/10 the size of an antibody, it is easier to deliver the drug to the target site. Since aptamers are produced by chemical synthesis, various modifications can be easily made, and the cost can be reduced by mass production. On the other hand, the blood half-life of aptamers is generally shorter than that of antibodies. However, this point may be a merit when toxicity is considered. From the above points, even if the drug targets the same molecule, the aptamer drug may be superior to the antibody drug.
  • Patent Document 10 describes aptamers to NGF obtained by automated SELEX
  • Patent Document 11 describes modified and modified aptamers obtained in Patent Document 10. Yes.
  • An object of the present invention is to provide an aptamer for NGF and a method for using the aptamer.
  • an object is to provide an aptamer having a short chain length suitable for pharmaceutical use.
  • the present invention provides the following inventions and the like: [1] An aptamer that binds to NGF satisfying the following (1) and (2): (1) It contains the sequence represented by UGAAAARAAACC (SEQ ID NO: 64) or CGAAMRAAACU (SEQ ID NO: 65). (2) The base length is 73 or less. [2] The aptamer according to [1], which inhibits binding between NGF and an NGF receptor. [3] The aptamer according to [1] or [2], which inhibits NGF neurite outgrowth activity or cell proliferation activity. [4] The aptamer according to [3], wherein the 50% inhibitory concentration is 10 nM or less.
  • [7] The aptamer according to [1] or [2], comprising the nucleotide sequence of any of the following (a), (b), or (c): (A) a nucleotide sequence selected from any one of SEQ ID NOs: 1 to 54 (provided that uracil may be thymine); (B) a nucleotide sequence in which one or several nucleotides are substituted, deleted, inserted or added in a nucleotide sequence selected from any one of SEQ ID NOs: 1 to 54 (however, uracil may be thymine) Or (c) a nucleotide sequence having at least 70% identity with a nucleotide sequence selected from any of SEQ ID NOs: 1 to 54 (provided that uracil may be thymine); [8] The aptamer according to any one of [1] to [7], wherein at least one nucleotide is modified.
  • the 2′-position hydroxyl group of ribose of each purine nucleotide is the same or different and is unsubstituted or substituted with an atom or group selected from the group consisting of a hydrogen atom, a fluorine atom and a methoxy group
  • the aptamer according to any one of [10].
  • a nucleic acid comprising a nucleotide sequence selected from any one of SEQ ID NOs: 1 to 54 and having a base length of 73 or less.
  • the nucleic acid according to [13] wherein at least one nucleotide is modified.
  • the nucleic acid according to [14] which is modified with inverted dT or polyethylene glycol.
  • the hydroxyl group at the 2 ′ position of ribose of each pyrimidine nucleotide is the same or different and is unsubstituted or substituted with an atom or group selected from the group consisting of a hydrogen atom, a fluorine atom and a methoxy group , [14] to [16].
  • the hydroxyl group at the 2′-position of ribose of each purine nucleotide is the same or different and is unsubstituted or substituted with an atom or group selected from the group consisting of a hydrogen atom, a fluorine atom and a methoxy group , [14] to [16].
  • a hydrophobic substance-added aptamer that binds to NGF. [20] The aptamer according to [19], which inhibits binding between NGF and an NGF receptor. [21] The aptamer according to [20], which inhibits neurite outgrowth activity or cell proliferation activity of NGF.
  • aptamer according to [21], wherein the 50% inhibitory concentration is 10 nM or less comprising the nucleotide sequence of any of the following (a ′), (b ′) or (c ′): (A ′) a nucleotide sequence selected from any of SEQ ID NOs: 55 to 63 (provided that uracil may be thymine); (B ′) a nucleotide sequence selected from any one of SEQ ID NOs: 55 to 63 (provided that uracil may be thymine), wherein one or several nucleotides are substituted, deleted, inserted or added Or (c ′) a nucleotide sequence having 70% or more identity with a nucleotide sequence selected from any of SEQ ID NOs: 55 to 63 (provided that uracil may be thymine).
  • the hydroxyl group at the 2′-position of ribose of each pyrimidine nucleotide is the same or different and is unsubstituted or substituted with an atom or group selected from the group consisting of a hydrogen atom, a fluorine atom and a methoxy group The aptamer according to any one of [26] to [28].
  • the hydroxyl group at the 2 ′ position of ribose of each purine nucleotide is the same or different and is unsubstituted or substituted with an atom or group selected from the group consisting of a hydrogen atom, a fluorine atom and a methoxy group The aptamer according to any one of [26] to [28].
  • a complex comprising the aptamer according to any one of [1] to [12] and [19] to [30] or the nucleic acid according to any one of [13] to [18] and a functional substance body.
  • the complex according to [31] wherein the functional substance is an affinity substance, a labeling substance, an enzyme, a drug delivery vehicle, or a drug.
  • the aptamer according to any one of [1] to [12] and [19] to [30], the nucleic acid according to any one of [13] to [18], or [31] or [32 ] The pharmaceutical composition containing the composite_body
  • the aptamer, the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention, and a complex thereof can be useful as a medicine for a disease such as pain or an inflammatory disease, a diagnostic agent, or a reagent.
  • the aptamers and complexes of the present invention may also be useful for NGF purification and enrichment, and NGF detection and quantification.
  • aptamer ID: 26,48,57 bonds with human NGF.
  • Aptamer ID: 26 ( ⁇ ) means an aptamer in which a mutation has been introduced at one location of the aptamer represented by aptamer ID: 26 (g19 ⁇ g (M)) and the binding activity has been lost.
  • the present invention includes an aptamer that binds to NGF (hereinafter referred to as “the present invention”), which comprises the sequence represented by UGAAAARAAACC (SEQ ID NO: 64) or CGAAMRAAACU (SEQ ID NO: 65) and has a base length of 73 or less. Of aptamer). These sequences may be modified as described below.
  • the aptamer provided in the present invention is an aptamer having binding activity to NGF.
  • the aptamer of the present invention can inhibit the activity of NGF by binding to NGF and inhibiting the binding between NGF and the NGF receptor.
  • An aptamer refers to a nucleic acid molecule that has binding activity to a predetermined target molecule. Aptamers can inhibit the activity of a given target molecule by binding to the given target molecule.
  • the aptamer of the present invention may be a nucleic acid such as RNA, DNA, modified nucleic acid or a mixture thereof.
  • the aptamer of the present invention can also be a nucleic acid in a linear or circular form. That is, in the following, the aptamer of the present invention may be referred to as “the nucleic acid of the present invention”.
  • sequence specified by “SEQ ID NO” means the nucleotide sequence of each aptamer or nucleic acid.
  • the nucleic acid containing the sequence of SEQ ID NO: 1 means a natural sequence containing the sequence of SEQ ID NO: 1. It means a nucleic acid composed of a nucleic acid, a modified nucleic acid, or both.
  • the nucleotide sequence of the sequence number of each aptamer is described in the sequence listing.
  • NGF is a known neurotrophin and is an important secreted protein involved in the development and survival of peripheral and central neurons.
  • NGF particularly means ⁇ -type NGF.
  • the amino acid sequence of human ⁇ -NGF is represented by Accession Number NP002497, P01138, AAI26151, AAI26149, CAB75625, but may be a mutated one, its domain, or peptide. Moreover, not only a monomer but a dimer and a multimer may be sufficient.
  • the aptamer of the present invention binds to NGF in a physiological buffer (eg, solution A: see Example 2).
  • the aptamer of the present invention binds to NGF with an intensity that can be detected by, for example, the following test.
  • BIAcore2000 manufactured by BIAcore is used for the measurement.
  • the aptamer is immobilized on the sensor chip. The amount immobilized is 1000 RU.
  • An NGF solution (0.5 ⁇ M) is prepared with a physiological buffer containing 0.3 M NaCl (Solution A: see Example 2). 20 ⁇ L of this NGF solution is injected, and the binding of NGF to the aptamer is detected.
  • RNA containing random nucleotides consisting of 40 nucleotides is used as a negative control.
  • NGF binds significantly more strongly to the aptamer than the control RNA, it is determined that the aptamer has the ability to bind to NGF.
  • the aptamer of the present invention inhibits the activity of NGF by binding to NGF and inhibiting the binding between NGF and the NGF receptor.
  • “inhibitory activity against NGF” means the ability to inhibit any activity possessed by NGF.
  • the activity of inhibiting the binding of NGF to the NGF receptor include inhibition of signal transduction downstream of the NGF receptor (Ras-MAP kinase pathway, PI3 kinase pathway) caused by binding of NGF to the NGF receptor, TRPV1, SP And inhibition of increased expression of BDNF and the like, and inhibitory activity of expression of HA, BK, PG, NGF and other cytokines released from mast cells.
  • the preferred “inhibitory activity against NGF” of the aptamer of the present invention is an activity that inhibits NGF binding to the NGF receptor, an activity that inhibits neurite outgrowth activity induced by NGF, and is induced by NGF. Such as an activity that inhibits cell proliferation activity.
  • NGF receptor means a cell surface protein to which NGF binds. TrkA and p75 are known as NGF receptors.
  • the NGF receptor referred to in the present invention may be a protein containing a natural amino acid sequence or a variant thereof.
  • the “variant thereof” refers to an amino acid sequence obtained by substituting several amino acids of “NGF receptor” or a part of the amino acid sequence, having binding activity to NGF, and NGF and NGF receptor.
  • the aptamer of the present invention is an aptamer that binds to NGF and inhibits the binding between NGF and the NGF receptor. Whether the aptamer inhibits the binding of NGF to the NGF receptor can be evaluated, for example, by the following test.
  • BIAcore2000 manufactured by BIAcore is used for the measurement.
  • An NGF receptor / Fc fusion protein eg, Trk A-Fc (175-TK, R & D systems) or p75-Fc (R & D systems)
  • is immobilized on the CM5 sensor chip and the amount to be immobilized is 500 to 700 RU.
  • NGF (0.1 ⁇ M) and aptamer (0.2 ⁇ M) are mixed in a physiological buffer solution (Solution A: see Example 2 described later), and a mixed solution to be a sample is prepared over 30 minutes.
  • the mixture is injected into BIAcore 2000 and binding of NGF to the NGF receptor is detected.
  • the inhibitory activity% is 90% or more, it is determined that the aptamer inhibits the binding of NGF to the NGF receptor.
  • Inhibitory activity% is calculated by assuming that the binding amount of NGF not containing an aptamer and NGF receptor is 0, and that the binding amount when a solution not containing NGF is injected is 100.
  • the binding amount means the RU value at the peak top of the BIAcore sensorgram (the RU value immediately after the end of NGF injection).
  • the aptamer of the present invention can inhibit both the binding between NGF and TrkA and the binding between NGF and p75.
  • the aptamer of the present invention may have an inhibitory activity against NGF derived from any mammal.
  • mammals include, for example, primates (eg, humans, monkeys), rodents (eg, mice, rats, guinea pigs), and pets, livestock and working animals (eg, dogs, cats, horses, cows). , Goats, sheep, pigs).
  • the aptamer of the present invention is not particularly limited as long as it can bind to any part of NGF and inhibit the binding between NGF and the NGF receptor.
  • the aptamer of the present invention is an aptamer comprising a sequence represented by UGAAAARAAACC (SEQ ID NO: 64) or CGAAMRAAACU (SEQ ID NO: 65).
  • M in SEQ ID NO: 65 means adenosine or cytidine
  • R in SEQ ID NOs: 64 and 65 means guanosine or adenosine.
  • Examples of the sequence shown in SEQ ID NO: 64 include UGAAAAAAAACC (SEQ ID NO: 66) and UGAAAGAAACC (SEQ ID NO: 67).
  • Examples of the sequence shown in SEQ ID NO: 65 include CGAACAAAACU (SEQ ID NO: 68) and CGAAAGAAACU (SEQ ID NO: 69). These sequences may be modified as described below.
  • the aptamer of the present invention is characterized in that the base length is 73 or less. Aptamers of 74 nucleotides or more are often difficult to apply as pharmaceuticals due to their long chain length. In other words, if the total number of nucleotides is 73 or less, chemical synthesis and mass production of aptamers are easier, and the merit in cost is also great. Moreover, chemical modification is easy, it is easy to improve in vivo stability, and it is thought that toxicity is low.
  • the aptamer of the present invention has a shorter base length than 73 nucleotides, preferably 70 nucleotides or less, more preferably 50 nucleotides or less, and most preferably 45 nucleotides. Can be no more than nucleotides.
  • the total number of nucleotides in the “nucleic acid” portion is too small, it may bind to NGF and be unable to inhibit the binding between NGF and the NGF receptor.
  • An appropriate minimum number of nucleotides can be appropriately determined by those skilled in the art according to the purpose.
  • the aptamer of the present invention may be an aptamer that inhibits NGF neurite outgrowth activity or NGF cell proliferation activity by binding to NGF and / or inhibiting the binding of NGF and NGF receptor. Whether or not the aptamer of the present invention inhibits the neurite outgrowth activity of NGF can be evaluated by the test described in Example 3. Whether the aptamer of the present invention inhibits the cell growth activity of NGF can be evaluated by the test described in Example 4.
  • the aptamer concentration of the present invention (IC50; 50% inhibitory concentration) when the NGF neurite outgrowth activity or NGF cell proliferation activity is 50% is preferably 10 nM or less, more preferably 1 nM or less. It is.
  • Each nucleotide contained in the aptamer of the present invention is the same or different and contains a hydroxyl group at the 2 ′ position of ribose (eg, ribose of pyrimidine nucleotide, ribose of purine nucleotide) (ie, nucleotide that is unsubstituted).
  • ribose eg, ribose of pyrimidine nucleotide, ribose of purine nucleotide
  • the hydroxyl group can be a nucleotide replaced with any atom or group.
  • Examples of such an arbitrary atom or group include a hydrogen atom, a fluorine atom, —O-alkyl group (eg, —O—Me group), —O-acyl group (eg, —O—CHO group), amino Examples include nucleotides that are replaced with groups (eg, —NH 2 groups). The cases where the hydroxyl group is replaced with a hydrogen atom, a fluorine atom or a —O—Me group at the 2′-position of ribose are shown below.
  • the aptamer of the present invention also has at least one (eg, 1, 2, 3 or 4) nucleotides at the 2 ′ position of ribose, a hydroxyl group, or any atom or group described above, eg, a hydrogen atom, It may be a nucleotide containing at least two kinds (for example, 2, 3 or 4 kinds) of groups selected from the group consisting of a fluorine atom, a hydroxyl group and an —O—Me group.
  • the aptamer of the present invention is also a nucleotide in which all pyrimidine nucleotides are the same or different and substituted with a fluorine atom at the 2′-position of ribose, or any atom or group described above, preferably a hydrogen atom.
  • the aptamer of the present invention is also a nucleotide in which all purine nucleotides are the same or different at the 2 ′ position of ribose and substituted with a hydroxyl group, or any atom or group described above, preferably a hydrogen atom.
  • the aptamer of the present invention also has a group in which all nucleotides are, at the 2 ′ position of ribose, a hydroxyl group, or any atom or group described above, for example, a hydrogen atom, a fluorine atom, a hydroxyl group, and an —O—Me group. It may be a nucleotide containing the same group selected from.
  • the mode of modification to the sugar group in the nucleotide will be described. Does not mean that DNA is excluded from the nucleotides constituting, and is appropriately read as a modification to DNA.
  • the nucleotide constituting the aptamer is DNA
  • the replacement of the 2′-position hydroxyl group of ribose with X is read as the replacement of one hydrogen atom of the 2′-position of deoxyribose with X.
  • aptamer of the present invention by substituting uracil with thymine, binding to NGF, binding inhibition activity between NGF and NGF receptor, NGF neurite outgrowth inhibition activity, NGF cell growth inhibitory activity, aptamer It is possible to improve stability, drug delivery property, stability in blood, and the like.
  • the aptamer of the present invention is characterized by having no binding activity to neurotrophin 3 (hereinafter referred to as NT-3).
  • NT-3 neurotrophin 3
  • having no binding activity to NT-3 means that the binding between each protein and the aptamer of the present invention is below the detection limit in various binding assays. Specifically, for example, it means that no response is obtained in the surface plasmon resonance sensorgram, and the measurement can be performed by the method described in Example 7.
  • the aptamer of the present invention includes other neurotrophins other than NGF, specifically brain-derived neurotrophic factor (hereinafter referred to as BDNF), NT-3 and neurotrophin 4 / 5 (hereinafter referred to as NT-4 / 5) cell growth activity is not inhibited.
  • BDNF brain-derived neurotrophic factor
  • NT-3 neurotrophin 4 / 5
  • cell proliferation activity of other neurotrophins can be evaluated by the test described in Example 7.
  • BDNF, NT-3 or NT-4 / 5 means, for example, that the aptamer concentration of the present invention necessary for the aptamer of the present invention to inhibit cell growth of each neurotrophin by 50% ( IC50; 50% inhibitory concentration) is 100 nM or more for BDNF and NT-3, preferably 300 nM or more, more preferably 1000 nM or more, and NT-4 / 5 is 100 nM or more, preferably 300 nM or more. Say something.
  • an aptamer that does not inhibit the cell proliferation activity of BDNF, NT-3 and NT-4 / 5 can be mentioned.
  • BDNF BDNF
  • NT-3 and NT-4 / 5 mean BDNF, NT-3 and NT-4 / 5 of all mammalian species including humans, respectively.
  • the aptamer of the present invention is also (A) an aptamer comprising a nucleotide sequence selected from any of SEQ ID NOs: 1 to 54 (provided that uracil may be thymine); (B) a nucleotide sequence in which one or several nucleotides are substituted, deleted, inserted or added in a nucleotide sequence selected from any one of SEQ ID NOs: 1 to 54 (however, uracil may be thymine) Including aptamers; (C) a nucleotide sequence selected from any one of SEQ ID NOs: 1 to 54 (provided that uracil may be thymine) and 70% or more (preferably 80% or more, more preferably 90% or more, most preferably An aptamer comprising a nucleotide sequence having an identity of 95% or more); or (d) a plurality of linkages of (a) above, a plurality of linkages of (b) above, a plurality of link
  • the aptamers (b) to (d) above can bind to NGF and / or inhibit the activity of NGF (such as the binding activity with NGF receptor). Also preferably, the aptamers of (b) to (d) above bind to NGF and inhibit the binding between NGF and the NGF receptor, and / or bind to NGF, and NGF neurite outgrowth activity or It is an aptamer that inhibits cell proliferation activity. More preferably, the aptamer of (b) to (d) above is an aptamer having an inhibitory concentration of NGF neurite outgrowth or cell proliferation activity of 10 nM or less, more preferably NGF neurite outgrowth or cell An aptamer having an inhibitory concentration of proliferation activity of 1 nM or less.
  • the number of substitutions, deletions, insertions or additions is such that the aptamer binds to NGF and can inhibit the activity of NGF (binding activity with NGF receptor, etc.).
  • the number does not exceed 73, for example, about 30 or less, preferably about 20 or less, more preferably about 10 or less, even more preferably 5 or less, most preferably 4, 3, There can be two or one.
  • identity means an optimal alignment when two nucleotide sequences are aligned using a mathematical algorithm known in the art (preferably, the algorithm is an optimal alignment).
  • the percentage of identical nucleotide residues relative to all overlapping nucleotide residues which may allow for the introduction of gaps into one or both of the sequences.
  • connection can be made by tandem coupling.
  • a linker may be used for the connection.
  • Linkers include nucleotide chains (eg, 1 to about 20 nucleotides), non-nucleotide chains (eg, — (CH 2 ) n -linker, — (CH 2 CH 2 O) n -linker, hexaethylene glycol linker, TEG linker , A linker containing a peptide, a linker containing a —S—S— bond, a linker containing a —CONH— bond, and a linker containing a —OPO 3 — bond).
  • the number of the plurality of connected objects is not particularly limited as long as it is 2 or more, but may be 2, 3, or 4, for example.
  • Each nucleotide in the above (a) to (d) is the same or different and is a nucleotide containing a hydroxyl group at the 2 ′ position of ribose (eg, ribose of pyrimidine nucleotide), or at the 2 ′ position of ribose,
  • the hydroxyl group can be a nucleotide substituted with any group (eg, a hydrogen atom, a fluorine atom or a —O—Me group).
  • the aptamer of the present invention has binding activity to NGF, binding inhibition activity between NGF and NGF receptor, NGF neurite outgrowth inhibition activity, NGF cell growth inhibitory activity, aptamer stability, drug delivery property, in blood
  • sugar residues eg, ribose
  • examples of the site modified in the sugar residue include those in which the oxygen atom at the 2′-position, 3′-position and / or 4′-position of the sugar residue is replaced with another atom.
  • modifications include fluorination, O-alkylation (eg, O-methylation, O-ethylation), O-allylation, S-alkylation (eg, S-methylation, S-ethylation). ), S-allylation, amination (eg, —NH 2 ).
  • 4′-SRNA in which oxygen at the 4′-position is replaced with sulfur
  • LNA Locked Nucleic Acid
  • the 2′-position and the 4′-position are cross-linked via methylene
  • the hydroxyl group at the 3′-position as an amino group
  • Examples of the substituted 3′-N-phosphoramidate nucleic acid can be given.
  • Such modification of sugar residues can be performed by a method known per se (for example, Sproat et al., (1991) Nucle. Acid. Res. 19, 733-738; Cotton et al., (1991)). Nucl. Acid. Res. 19, 2629-2635; Hobbs et al., (1973) Biochemistry 12, 5138-5145).
  • the aptamer of the present invention also has binding activity to NGF, binding inhibitory activity between NGF and NGF receptor, NGF neurite outgrowth inhibitory activity, NGF cell growth inhibitory activity, aptamer stability, drug delivery, in blood
  • the nucleobase eg, purine, pyrimidine
  • the nucleobase may be modified (eg, chemically substituted). Examples of such modifications include 5-position pyrimidine modification, 6- and / or 8-position purine modification (such as O-methyl modification), modification with exocyclic amine, substitution with 4-thiouridine, 5-bromo or 5- Substitution with iodo-uracil.
  • the phosphate group contained in the aptamer of the present invention may be modified so as to be resistant to nuclease and hydrolysis.
  • the phosphate moiety of an aptamer is P (O) S (thioate), P (S) S (dithioate), P (O) NR 2 (amidate), P (O) R, P (O) OR ′, CO Or CH 2 (form acetal), P (O) BH 3 (boranophosphate) or 3′-amine (—NH—CH 2 —CH 2 —), where each R or R 'Is independently H, or substituted or unsubstituted alkyl (eg, methyl, ethyl)].
  • the linking group include —O—, —N—, and —S—, which can be bonded to adjacent nucleotides through these linking groups. Modifications may also include 3 ′ and 5 ′ modifications such as capping.
  • the modifications are further made of polyethylene glycol (hereinafter sometimes referred to as “PEG”), amino acids, peptides, inverted dT, Myristoy, Lithoholic-oleyl, Docosanyl, Lauroyl, Stearoyl, Palmitoyl, Oleoyl, Other lipids, It can be carried out by adding cholesterol, caffeine, vitamins, dyes, fluorescent substances, anticancer agents, toxins, enzymes, radioactive substances, biotin and the like to the end. See, for example, US Pat. Nos. 5,660,985 and 5,756,703 for such modifications.
  • the molecular weight of PEG is not particularly limited, but is preferably 1,000 to 100,000, more preferably 30,000 to 90,000.
  • PEG may be linear or may be branched into two or more chains (multi-arm PEG).
  • Such PEG is not particularly limited, and those skilled in the art can appropriately select and use commercially available or known PEG (for example, http://www.peg-drug.com/peg_product/branched.html).
  • PEG to be applied to the aptamer of the present invention specifically, a bibranched GS type PEG having a molecular weight of 40000 (SUNBRIGHT GL2-400GS2 manufactured by NOF Corporation), a bibranched TS type PEG having a molecular weight of 40000 (SUNBRIGHT GL2-400TS made by NOF), 4-branched TS type PEG having a molecular weight of 40000 (SUNBRIGHT GL4-400TS made by NOF), bibranched TS type PEG having a molecular weight of 80000 (SUNBRIGHT GL2-800TS made by NOF), or a molecular weight of 80000 4 Toki TS type PEG (manufactured by SUNBRIGHT GL4-800TS Date oil), and the like.
  • SUNBRIGHT GL2-400GS2 manufactured by NOF Corporation
  • a bibranched TS type PEG having a molecular weight of 40000 SUNBRIGHT GL2-400TS made by NOF
  • PEG may be directly added to the terminal, but a linker having a group capable of binding to PEG is added to the terminal, through which PEG is added to the aptamer of the present invention. It is more preferable to add.
  • the linker between PEG and the aptamer of the present invention is not particularly limited, and the number of carbon chains, functional groups, and the like can be appropriately selected according to the binding site, the type of PEG, and the like.
  • Examples of such a linker include a linker having an amino group.
  • SAFC ssH Linker
  • DMS O
  • MT-AMINO-MODIFIER GLENRESERCH
  • TFA Amino C-6 lcaa CPG (ChemGenes) is exemplified.
  • this linker for example, an N-hydroxysuccinimide active group is added to PEG, and this is reacted with an amino group on the linker side, thereby binding the aptamer of the present invention and PEG via the linker. can do.
  • PEG and a linker a commercially available thing can be used preferably.
  • those skilled in the art can appropriately set reaction conditions relating to the binding of PEG, linker, and aptamer of the present invention.
  • the aptamer of the present invention can be chemically synthesized by the disclosure in the present specification and a method known per se in the technical field.
  • Aptamers bind to a target substance by various binding modes such as ionic bonds using the negative charge of the phosphate group, hydrophobic bonds and hydrogen bonds using ribose, hydrogen bonds using nucleobases and stacking bonds.
  • the ionic bond utilizing the negative charge of the phosphate group that exists in the number of constituent nucleotides is strong and binds to the positive charge of lysine or arginine present on the surface of the protein. For this reason, nucleobases that are not involved in direct binding to the target substance can be substituted.
  • the stem structure portion is already base-paired and faces the inside of the double helix structure, so that the nucleobase is difficult to bind directly to the target substance. Therefore, the activity of the aptamer is often not reduced even if the base pair is replaced with another base pair. Even in a structure that does not form a base pair, such as a loop structure, base substitution is possible when the nucleobase is not involved in direct binding to the target molecule.
  • the modification of the 2 'position of ribose in rare cases, the functional group at the 2' position of ribose may directly interact with the target molecule, but in many cases it is irrelevant and can be replaced with other modified molecules. Is possible.
  • aptamers often retain their activity unless functional groups involved in direct binding to the target molecule are replaced or deleted. It is also important that the overall three-dimensional structure does not change significantly.
  • Aptamers are produced using SELEX and its improved methods (eg, Ellington et al., (1990) Nature, 346, 818-822; Tuerk et al., (1990) Science, 249, 505-510). be able to.
  • SELEX by increasing the number of rounds or using a competitive substance, aptamers having a stronger binding power to the target substance are concentrated and selected. Therefore, by adjusting the number of rounds of SELEX and / or changing the competition state, aptamers with different binding strengths, aptamers with different binding modes, binding strengths and binding modes are the same, but base sequences are different. Aptamers may be obtained.
  • SELEX includes an amplification process by PCR. It is possible to perform SELEX with more diversity by introducing mutation by using manganese ions in the process.
  • An aptamer obtained by SELEX is a nucleic acid having a high affinity for a target substance, which does not mean binding to the active site of the target substance. Therefore, the aptamer obtained by SELEX does not necessarily affect the function of the target substance.
  • NGF is a basic protein, and it is considered that nucleic acids are likely to bind nonspecifically. Aptamers that do not bind to the active site do not affect the activity of the target substance. In fact, the RNA used as a control did not inhibit the binding of NGF and NGF receptor.
  • SELEX based on the acquired aptamer sequence can be performed to obtain an aptamer having higher activity based on the aptamer having activity selected in this way.
  • a specific method is to prepare a template in which a part of an aptamer whose sequence is determined is a random sequence or a template in which a random sequence of about 10 to 30% is doped, and perform SELEX again.
  • the aptamer obtained by SELEX has a length of about 80 nucleotides, and it is difficult to make it as a medicine as it is. Therefore, it is necessary to shorten the length to 73 nucleotides or less, preferably 70 nucleotides or less, more preferably 60 nucleotides or less, more preferably 50 nucleotides or less, and most preferably 45 nucleotides or less, which can be easily chemically synthesized by repeating trial and error. is there.
  • the aptamers obtained by SELEX vary in ease of subsequent minimization work depending on the primer design. If the primer is not designed well, even if active aptamers can be selected by SELEX, subsequent development becomes impossible. In the present invention, an aptamer having activity even at 43 nucleotides could be obtained.
  • Aptamers are easy to modify because they can be chemically synthesized. Aptamers use the MFOLD program to predict secondary structure, and to predict conformation by X-ray analysis or NMR analysis, which nucleotides can be replaced or deleted, and where new nucleotides can be found. It can be predicted to some extent whether or not can be inserted. Aptamers of the predicted new sequence can be easily chemically synthesized, and whether or not the aptamer retains activity can be confirmed by existing assay systems.
  • sequence represented by the above-mentioned UGAAAARAAACC (SEQ ID NO: 64) or CGAAMRAAACU (SEQ ID NO: 65) is an important part for the binding of the aptamer of the present invention to NGF and inhibiting the binding between NGF and the NGF receptor.
  • UGAAAARAAACC SEQ ID NO: 64
  • CGAAMRAAACU SEQ ID NO: 65
  • adding new sequences at both ends of these sequences often does not change activity.
  • these sequences may be subjected to the modification.
  • the modification can be designed or altered to a high degree as well as the sequence.
  • aptamers can be highly designed or modified.
  • the present invention also includes a predetermined sequence (eg, a sequence corresponding to a portion selected from a stem portion, an internal loop portion, a hairpin loop portion, and a single-stranded portion: hereinafter, abbreviated as a fixed sequence if necessary).
  • a predetermined sequence eg, a sequence corresponding to a portion selected from a stem portion, an internal loop portion, a hairpin loop portion, and a single-stranded portion: hereinafter, abbreviated as a fixed sequence if necessary.
  • the method for producing such aptamer is as follows:
  • (N) a represents a nucleotide chain consisting of a N
  • (N) b represents a nucleotide chain consisting of b N
  • N is the same or different, respectively, A, G
  • It is a nucleotide selected from the group consisting of C, U and T (preferably A, G, C and U).
  • a and b are the same or different and may be any number, for example, 1 to about 100, preferably 1 to about 50, more preferably 1 to about 30, even more preferably 1 to about There may be 20 or 1 to about 10.
  • nucleic acid molecule corresponds to a single type of nucleic acid molecule or a plurality of types of nucleic acid molecules (eg, a library of nucleic acid molecules having different numbers of a and b, etc.) and primer sequences (i) and (ii), respectively. Producing an aptamer containing a fixed sequence using the primer pair.
  • the aptamer of the present invention is preferably an aptamer that binds to NGF, comprising the sequence represented by SEQ ID NO: 26 and having a base length of 73 or less.
  • the sequence represented by SEQ ID NO: 26 is an important part for functioning as the aptamer of the present invention, such as binding of the aptamer of the present invention to NGF and inhibiting the binding between NGF and the NGF receptor. Even if a new sequence is added to both ends of the sequence, the function as the aptamer of the present invention is not impaired.
  • these sequences may be subjected to the above-described modification of sugar residues, modification of nucleobases and phosphate groups.
  • an aptamer that binds to NGF comprising the sequence represented by SEQ ID NO: 26 and having a base length of 73 or less, (I) an aptamer wherein at least one nucleotide is substituted at the 2 ′ position of ribose with a hydroxyl group replaced by a hydrogen atom, a fluorine atom, an —O-alkyl group, an —O-acyl group or an amino group; (Ii) PEG, amino acid, peptide, inverted dT, Myristoy, Lithocolic-oleyl, Docosanyl, Lauroyl, Stearoyl, Palmitoyl, Oleoyl, Linoleoyl, other lipids, steroids, cholesterol, caffeine, vitamins An aptamer with an enzyme, radioactive substance or biotin added to the end; (Iii) an aptamer that satisfies the requirements of (i) and (i
  • the present invention also provides a hydrophobic substance-added aptamer that binds to NGF (hereinafter referred to as “hydrophobic substance-added aptamer of the present invention”).
  • the hydrophobic substance-added aptamer refers to an aptamer bound to a hydrophobic substance. That is, the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention refers to a substance in which an “aptamer” part and a “hydrophobic substance” part are combined. The “aptamer” part and the “hydrophobic substance” part may be linked by a “linker” part.
  • the “aptamer” portion of the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention is as described in the previous “aptamer of the present invention”. Therefore, the type of nucleotide constituting the aptamer moiety is not particularly limited as long as the hydrophobic substance-added aptamer binds to NGF. That is, as long as the above conditions are satisfied, it may be any of nucleotides known per se, such as DNA and RNA, modified nucleic acid, or a mixture thereof, and may be double-stranded or single-stranded. Further, the nucleotide sequence itself is not particularly limited.
  • the “modified nucleic acid” refers to a “nucleotide substituted (modified) at a substitutable position” shown below, unless otherwise specified.
  • the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention may be a hydrophobic substance-added aptamer that binds to NGF and inhibits the binding between NGF and the NGF receptor. Whether or not the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention inhibits the binding between NGF and the NGF receptor can be evaluated by the test in the previous “aptamer of the present invention” or the test described in Example 2.
  • the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention may be a hydrophobic substance-added aptamer that binds to NGF and inhibits NGF neurite outgrowth activity or NGF cell proliferation activity. Whether the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention inhibits the neurite outgrowth activity of NGF can be evaluated by the test in the previous “aptamer of the present invention” or the test described in Example 3. Further, whether or not the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention inhibits the cell growth activity of NGF can be evaluated by the test in the previous “aptamer of the present invention” or the test described in Example 4.
  • the hydrophobic substance-added aptamer concentration (IC50; 50% inhibitory concentration) of the present invention when NGF neurite outgrowth activity or NGF cell proliferation activity is 50% is preferably 10 nM or less, more preferably Is 3 nM or less.
  • Each nucleotide contained in the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention is a nucleotide containing a hydroxyl group at the 2′-position of ribose (that is, an unsubstituted nucleotide), as in the aptamer of the present invention.
  • the hydroxyl group can be a nucleotide replaced with any atom or group. Examples of such an arbitrary atom or group include the same atoms or groups as those mentioned for the aptamer of the present invention.
  • the base length of the “aptamer” portion of the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention is not particularly limited as long as the hydrophobic substance-added aptamer binds to NGF and inhibits the binding between NGF and the NGF receptor, but 73 nucleotides or less. (In addition, when the 5 ′ end or the 3 ′ end is modified with inverted dT, this is not counted in the base length). Hydrophobic substance-added aptamers having 74 nucleotides or more are often difficult to apply as pharmaceuticals due to their long chain length.
  • the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention has a shorter base length than 73 nucleotides, preferably 70 nucleotides or less, more preferably 50 nucleotides or less, Most preferably it may be 45 nucleotides or less.
  • nucleic acid portion if the total number of nucleotides in the “nucleic acid” portion is too small, it may bind to NGF and be unable to inhibit the binding between NGF and the NGF receptor.
  • An appropriate minimum number of nucleotides can be appropriately determined by those skilled in the art according to the purpose.
  • Each nucleotide constituting the “aptamer” part is substituted (modified) at substitutable positions as long as the hydrophobic substance-added aptamer binds to NGF and inhibits the binding between NGF and the NGF receptor. It may be a nucleotide. It may also be a nucleotide that is not substituted (modified) at all. In the case of substitution (modification), those skilled in the art will know the “substitutable position”, and it is also possible to select a substituent known per se for the substituent.
  • nucleotides substituted (modified) at substitutable positions are preferably such that each nucleotide is ribose.
  • a ribose at the 2 ′ position of a pyrimidine nucleotide ie, an unsubstituted nucleotide
  • the hydroxyl group is the same or different, and any atom or substitution
  • a nucleotide that is replaced with a group is the same or different, and any atom or substitution
  • Examples of the atom or substituent include a hydrogen atom, a halogen atom (eg, fluorine atom), an —O-alkyl group (eg, —O—Me group), an —O-acyl group (eg, —O—CHO group). ), An amino group (eg, —NH 2 group) and the like.
  • a halogen atom eg, fluorine atom
  • an —O-alkyl group eg, —O—Me group
  • an —O-acyl group eg, —O—CHO group
  • An amino group eg, —NH 2 group
  • nucleotide constituting the hydrophobic substance-added aptamer is RNA (that is, assuming that the sugar group is ribose)
  • the mode of modification to the sugar group in the nucleotide will be described.
  • DNA is excluded from nucleotides constituting the hydrophobic substance-added aptamer, but can be read as appropriate modification to DNA.
  • the nucleotide constituting the aptamer is DNA
  • the replacement of the 2′-position hydroxyl group of ribose with X is read as the replacement of one hydrogen atom of the 2′-position of deoxyribose with X.
  • hydrophobic substance-added aptamer of the present invention by substituting uracil with thymine, binding to NGF, binding inhibition activity between NGF and NGF receptor, NGF neurite outgrowth inhibition activity, NGF cell growth inhibition It is possible to enhance activity, aptamer stability, drug delivery properties, stability in blood, and the like.
  • the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention also has (A ′) a hydrophobic substance-added aptamer comprising a nucleotide sequence selected from any of SEQ ID NOs: 55 to 63 (provided that uracil may be thymine); (B ′) a nucleotide sequence in which one or several nucleotides are substituted, deleted, inserted or added in a nucleotide sequence selected from any of SEQ ID NOs: 55 to 63 (provided that uracil may be thymine)
  • a hydrophobic substance-added aptamer comprising: (C ′) a nucleotide sequence selected from SEQ ID NOs: 55 to 63 (provided that uracil may be thymine) and 70% or more (preferably 80% or more, more preferably 90% or more, most preferably Is a hydrophobic substance-added aptamer comprising a nucleotide sequence having an identity of 9
  • the aptamers or conjugates of the above (b ′) to (d ′) can bind to NGF and / or inhibit the activity of NGF (such as binding activity to NGF receptor). Also preferably, the aptamers or conjugates of (b ′) to (d ′) above bind to NGF and bind to NGF and / or NGF receptor, and / or bind to NGF, and NGF nerves. It is an aptamer that inhibits cell process elongation activity. More preferably, the aptamers or conjugates of (b ′) to (d ′) are aptamers having an inhibitory concentration of NGF neurite outgrowth or cell proliferation activity of 10 nM or less, more preferably NGF neurons. It is an aptamer or a conjugate having an inhibitory concentration of cell process elongation or cell proliferation activity of 3 nM or less.
  • the number of substitutions, deletions, insertions or additions is such that the aptamer binds to NGF and can inhibit NGF activity (binding activity with NGF receptor, etc.)
  • the number of nucleotides is not particularly limited as long as it does not exceed 73, but for example, about 30 or less, preferably about 20 or less, more preferably about 10 or less, even more preferably 5 or less, and most preferably 4, 3 or less. There can be two or one.
  • connection can be performed by a tandem bond.
  • a linker may be used for the connection.
  • Linkers include nucleotide chains (eg, 1 to about 20 nucleotides), non-nucleotide chains (eg, — (CH 2 ) n -linker, — (CH 2 CH 2 O) n -linker, hexaethylene glycol linker, TEG linker , A linker containing a peptide, a linker containing a —S—S— bond, a linker containing a —CONH— bond, and a linker containing a —OPO 3 — bond).
  • the number of the plurality of connected objects is not particularly limited as long as it is 2 or more, but may be 2, 3, or 4, for example.
  • Each nucleotide in the above (a ′) to (d ′) is the same or different and is a nucleotide containing a hydroxyl group at the 2 ′ position of ribose (eg, ribose of a pyrimidine nucleotide), or the 2 ′ position of ribose.
  • the hydroxyl group may be a nucleotide substituted with any group (eg, hydrogen atom, fluorine atom or —O—Me group).
  • the modification further includes PEG, amino acid, peptide, inverted dT, Myristoy, Lithoholic-oleyl, Docosanyl, Lauroyl, Stearoyl, Palmitoyl, Oleoyl, Caffeine, Lipid It can be carried out by adding vitamins, dyes, fluorescent substances, anticancer agents, toxins, enzymes, radioactive substances, biotin and the like to the ends.
  • the above modification can be handled in the same manner as the aptamer of the present invention.
  • the substance constituting the “hydrophobic substance” portion of the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention can be substituted at any position as long as the hydrophobic substance-added aptamer binds to NGF and inhibits the binding between NGF and the NGF receptor.
  • the substance may be substituted (modified) in any way.
  • a person skilled in the art knows the “substitutable position” and can select a substituent known per se for the substituent.
  • hydrophobic substance examples include steroids and vitamins described later, preferably sterols, and more preferably cholesterols.
  • steroids are compounds having, as a basic skeleton, a cyclopentaphenanthrene skeleton or a skeleton resulting from cleavage, ring expansion, or ring contraction of one or more ring bonds therefrom, as a basic skeleton. Means a compound that is hydrogenated.
  • steroids include strophantidine, cholestanol, and steroid hormones (testosterone, estradiol, progesterone, cortisol, cortisone, aldosterone, corticosterone, deoxycorticosterone, etc.).
  • sterols means compounds in which the C-3 position of the A ring in the cyclopentaphenanthrene skeleton of steroids is hydroxylated or carbonylated.
  • sterols include steroid hormones, campesterol, sitosterol, stigmasterol, ergosterol, and the like.
  • cholesterols means sterols derived from animals, and include not only cholesterol but also those obtained by hydrogenation of cholesterol and those derivatized by ester reaction. Examples of such cholesterol derivatives include hydrogenated dihydrocholesterol and esters with lower or higher fatty acids. Cholesteryl hydroxystearate, cholesteryl oleate, cholesteryl isostearate, lanolin fatty acid cholesteryl, macadamia nut oil fatty acid cholesteryl, cholesteryl nonanoate, cholesteryl stearate, cholesteryl butyrate and the like are commercially available.
  • the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention may be formed by directly bonding an “aptamer” part and a “hydrophobic substance” part, or combining an “aptamer” part and a “hydrophobic substance” part with “ It may be formed by bonding at a “linker” portion.
  • the “aptamer” moiety and the “hydrophobic substance” moiety can be bound by methods known to those skilled in the art.
  • the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention binds to NGF, and NGF and NGF receptor There is no particular limitation as long as the binding of is inhibited, and those skilled in the art can appropriately determine.
  • linker examples include a saturated hydrocarbon chain (eg, a saturated hydrocarbon chain having 12 carbon atoms), a nucleotide chain (eg, 1 to about 20 nucleotides), a non-nucleotide chain (eg, — (CH 2 ) n A linker, a linker containing a peptide (eg, -Gly-Cys-), a linker containing a -SS-bond (eg,-(CH 2 ) m -SS- (CH 2 ) n- ), -CONH A linker containing a bond (eg, — (CH 2 ) m —CONH— (CH 2 ) n —, —O—CO—NH— (CH 2 ) n —), a linker containing a —OPO 3 — bond (eg, -(CH 2 ) m -O-PO 2 -O- (CH 2 ) n- ), polyethylene glycol
  • the linker portion may be one obtained by branching the linker exemplified above and adding a functional molecule such as a dimethoxytrityl group (DMT) or a fluorescent material (when these functional molecules are finally removed). Is). Further, it may be a peptide that can be recognized and cleaved by an enzyme such as thrombin, matrix metalloprotease (MMP), Factor X, or a polynucleotide that can be cleaved by a nuclease or a restriction enzyme.
  • a functional molecule such as a dimethoxytrityl group (DMT) or a fluorescent material (when these functional molecules are finally removed). Is). Further, it may be a peptide that can be recognized and cleaved by an enzyme such as thrombin, matrix metalloprotease (MMP), Factor X, or a polynucleotide that can be cleaved by a nuclease or a restriction enzyme.
  • saturated hydrocarbon chain for example, those having 3, 6, 12, 18, 24 carbon atoms are conceivable. Further, it may be branched.
  • nucleotide chain is a nucleotide containing a hydroxyl group at the 2 ′ position of ribose (eg, ribose of a pyrimidine nucleotide), or the hydroxyl group is an arbitrary group (eg, hydrogen at the 2 ′ position of ribose). Atoms, fluorine atoms or —O—Me groups) are included (modified) nucleotides.
  • the bonding between the “linker” portion and the “hydrophobic substance” portion is not particularly limited, and both portions can be bonded by methods known to those skilled in the art.
  • bonding of a "linker” part and an “aptamer” part is not specifically limited, either part can be couple
  • the “linker” portion and “hydrophobic substance” portion of the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention may be bonded to the 5 ′ end side of the “aptamer” portion, or may be bonded to the 3 ′ end side. Good. It may also be bound to both the 5 'end and the 3' end of the "aptamer” moiety. Alternatively, it may be bound to a nucleobase or ribose or phosphate part of the sequence in the middle of the “aptamer” part.
  • the “aptamer” portion of the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention can be produced by the same method as the production method of the aptamer of the present invention described above.
  • the hydrophobic substance-added aptamer of the present invention can be chemically synthesized by a method known per se in the art.
  • cholesterol can be added to the 5 ′ end of the synthesized aptamer using commercially available cholesterol TEG phosphoramidite (manufactured by Glen Research).
  • an optional linker can be added between the aptamer and cholesterol by simultaneously using Spacer18 (manufactured by Glen Research), which is a commercially available amidite body.
  • Cholesterol can be added to the 3 ′ end of the aptamer by using commercially available 3′-cholesterol TEG-CPG (manufactured by Glen Research).
  • a commercially available amidite body such as Spacer 18 (manufactured by Glen Research) can be used at the same time to add an optional linker between the aptamer and cholesterol.
  • cholesterol can be added to the nucleobase, ribose, and phosphate part of the intermediate sequence.
  • cholesterol can be added by a coupling reaction after nucleic acid synthesis using a synthesizer.
  • a synthesizer for adding an amino group to the 5 ′ end of the aptamer, commercially available 5′-amino-modifier C6-TFA (manufactured by Glen Research) or the like can be used.
  • a 3′-amino-modifier C7-CPG manufactured by Glen Research
  • Cholesterol can be added in the middle of the aptamer by using an amino group in a nucleobase or by introducing an amino group at the 5-position of pyrimidine, the 6-position of purine, or the like. Moreover, you may introduce
  • the coupling reaction between cholesterol and an amino group can be easily performed by adding an active group to cholesterol. Thereby, the hydrophobic substance addition aptamer of this invention can be manufactured.
  • the present invention also provides a complex comprising the aptamer of the present invention (hereinafter, including a hydrophobic substance-added aptamer) and a functional substance bound thereto.
  • the bond between the aptamer and the functional substance in the complex of the present invention can be a covalent bond or a non-covalent bond.
  • the complex of the present invention may be a conjugate of the aptamer of the present invention and one or more (eg, 2 or 3) of the same or different functional substances.
  • the functional substance is not particularly limited as long as it newly adds some function to the aptamer of the present invention or can change (eg, improve) some property that can be retained by the aptamer of the present invention.
  • Examples of the functional substance include proteins, peptides, amino acids, lipids, carbohydrates, monosaccharides, polynucleotides, and nucleotides.
  • Examples of functional substances include, for example, affinity substances (eg, biotin, streptavidin, polynucleotides having affinity for target complementary sequences, antibodies, glutathione sepharose, histidine), labeling substances (eg, fluorescent substances, Luminescent substances, radioisotopes), enzymes (eg, horseradish peroxidase, alkaline phosphatase), drug delivery vehicles (eg, liposomes, microspheres, peptides, polyethylene glycols), drugs (eg, calicheamicin and duocarmycin) Used in missile therapy, nitrogen mustard analogs such as cyclophosphamide, melphalan, ifosfamide or trophosphamide, ethyleneimines such as thiotepa, nitrosourea such as carmustine, temozo
  • ⁇ унк ⁇ онент ⁇ may eventually be removed. Furthermore, it may be a peptide that can be recognized and cleaved by an enzyme such as thrombin, matrix metalloprotease (MMP), Factor X, or a polynucleotide that can be cleaved by a nuclease or a restriction enzyme.
  • an enzyme such as thrombin, matrix metalloprotease (MMP), Factor X, or a polynucleotide that can be cleaved by a nuclease or a restriction enzyme.
  • the aptamer and complex of the present invention can be used, for example, as a pharmaceutical or diagnostic agent, test agent, reagent, drinking water or food additive, enhancer, or relaxation agent.
  • the aptamer and complex of the present invention may have an activity of inhibiting the function of NGF by binding to NGF and inhibiting the binding between NGF and the NGF receptor.
  • NGF is deeply related to pain and inflammation. Therefore, the aptamer (hydrophobic substance-added aptamer) and complex of the present invention are useful as medicaments (anti-pain agents, anti-inflammatory agents, etc.) for treating or preventing diseases associated with pain and inflammation.
  • nociceptive pain muscle pain, back pain, upper limb pain, lashing injury, joint pain, osteoarthritis, gout, rheumatoid arthritis, headache, migraine, tension headache, cluster headache, secondary sexual headache, oral and facial pain, toothache, causalgia after extraction, phantom tooth pain, visceral pain, heart pain, abdominal pain, intermediate pain, dysmenorrhea, labor pain, kidney pain, ureteral pain, bladder pain, etc.), inflammatory pain, neurogenic Pain (diabetic neuropathy, toxic neuropathy, postoperative pain, phantom limb pain, stump pain, reflex sympathetic dystrophy, causalgia, postherpetic pain, trigeminal neuralgia, central pain), cancer pain ( Pain due to cancer invasion of internal organs, pain caused by vascular occlusion due to blood vessel infiltration of cancer tissue, pain of bone metastasis, pain due to brain metastasis, pain due to peripheral nerve invasion of cancer tissue), fibromyalgia, etc.
  • the diseases associated with inflammation are not particularly limited, but include systemic lupus erythematosus, multiple sclerosis, psoriasis, osteoarthritis, rheumatoid arthritis, interstitial cystitis, asthma and the like.
  • the above cancer is not particularly limited, but esophageal cancer, thyroid cancer, bladder cancer, colon cancer, stomach cancer, pancreatic cancer, breast cancer, liver cancer, lung cancer, non-small cell lung cancer, breast cancer, neuroblastoma , Neuroblastoma, glioblastoma, uterine cancer, cervical cancer, ovarian cancer, Wilms tumor, prostate cancer and the like.
  • the aptamer and complex of the present invention can be used as a medicine or diagnostic agent, test agent, or reagent for diseases associated with activation of these signal transduction pathways. Examples of the diseases related to activation of these signal transduction pathways include the above pain, inflammatory diseases, and cancer.
  • the subject to which it is administered is not particularly limited.
  • primates eg, humans, monkeys
  • rodents Eg, mouse, rat, guinea pig
  • livestock and working animals eg, dogs, cats, horses, cows, goats, sheep, pigs.
  • the aptamer and complex of the present invention can specifically bind to NGF. Therefore, the aptamer and complex of the present invention are useful as a probe for NGF detection.
  • the probe is useful for in vivo imaging of NGF, blood concentration measurement, tissue staining, ELISA, and the like.
  • the probe is useful as a diagnostic agent, a test agent, a reagent and the like for diseases involving NGF (such as diseases associated with pain and inflammation).
  • the aptamer and complex of the present invention can be used as a ligand for separation and purification of NGF.
  • the aptamer and the complex of the present invention can be used as a test agent for examining a mental state such as romance, a pharmaceutical agent for adjusting the mental state, a regulator, an enhancer, and a relaxation agent.
  • the aptamer and complex of the present invention can also be used as a drug delivery agent.
  • the medicament of the present invention may be formulated with a pharmaceutically acceptable carrier.
  • pharmaceutically acceptable carriers include excipients such as sucrose, starch, mannitol, sorbit, lactose, glucose, cellulose, talc, calcium phosphate, calcium carbonate, cellulose, methylcellulose, hydroxypropylcellulose, polypropylpyrrolidone , Gelatin, gum arabic, polyethylene glycol, sucrose, starch and other binders, starch, carboxymethylcellulose, hydroxypropyl starch, sodium-glycol starch, sodium bicarbonate, calcium phosphate, calcium citrate and other disintegrants, magnesium stearate , Aerosil, Talc, Lubricant such as sodium lauryl sulfate, Citric acid, Menthol, Glycyllysine / Ammonium salt, Fragrance, such as Glycine, Orange powder, Sodium benzoate Preservatives such as sodium, sodium bisulfite, methylparaben, propylpara
  • Preparations suitable for oral administration include a solution in which an effective amount of a ligand is dissolved in a diluent such as water, physiological saline, orange juice, a capsule containing an effective amount of the ligand as a solid or a granule, a sachet or Examples thereof include tablets, suspensions in which an effective amount of an active ingredient is suspended in a suitable dispersion medium, and emulsions in which a solution in which an effective amount of an active ingredient is dissolved is dispersed in an appropriate dispersion medium and emulsified.
  • a diluent such as water, physiological saline, orange juice
  • a capsule containing an effective amount of the ligand as a solid or a granule a sachet or Examples thereof include tablets, suspensions in which an effective amount of an active ingredient is suspended in a suitable dispersion medium, and emulsions in which a solution in which an effective amount of an active ingredient is dissolved is dispersed
  • the medicament of the present invention can be coated by a method known per se for the purpose of taste masking, enteric solubility or sustainability, if necessary.
  • a coating agent used for coating for example, hydroxypropylmethylcellulose, ethylcellulose, hydroxymethylcellulose, hydroxypropylcellulose, polyoxyethylene glycol, Tween 80, Pluronic F68, cellulose acetate phthalate, hydroxypropylmethylcellulose phthalate, hydroxymethylcellulose acetate succinate, Eudragit (manufactured by Rohm, Germany, methacrylic acid / acrylic acid copolymer) and pigments (eg, Bengala, titanium dioxide, etc.) are used.
  • the medicine may be either an immediate release preparation or a sustained release preparation. Examples of the sustained release substrate include liposomes, atelocollagen, gelatin, hydroxyapatite, and PLGA.
  • Suitable formulations for parenteral administration are aqueous and non-aqueous isotonic.
  • parenteral administration eg, intravenous, subcutaneous, intramuscular, topical, intraperitoneal, nasal, pulmonary
  • aqueous and non-aqueous isotonic are aqueous and non-aqueous isotonic.
  • sterile injection solutions which may contain antioxidants, buffers, antibacterial agents, isotonic agents and the like.
  • aqueous and non-aqueous sterile suspensions can be mentioned, which may contain suspending agents, solubilizers, thickeners, stabilizers, preservatives and the like.
  • the preparation can be enclosed in a container in unit doses or multiple doses like ampoules and vials.
  • the active ingredient and a pharmaceutically acceptable carrier can be lyophilized and stored in a state that may be dissolved or suspended in a suitable sterile solvent immediately before use.
  • Sustained release preparations can also be mentioned as suitable preparations.
  • Sustained release formulations include artificial bones, biodegradable or non-degradable sponges, bags, drug pumps, osmotic pumps, sustained release forms from carriers or containers embedded in the body, or continuous or intermittent from outside the body. And the like delivered to the body or locally.
  • biodegradable base material examples include liposomes, cationic liposomes, poly (lactide-co-glycolic) acid (PLGA), atelocollagen, gelatin, hydroxyapatite, and polysaccharide schizophyllan.
  • inhalants and ointments are also possible.
  • the lyophilized active ingredient is refined and administered by inhalation using an appropriate inhalation device.
  • conventionally used surfactants, oils, seasonings, cyclodextrins or derivatives thereof can be appropriately blended as necessary.
  • surfactant examples include oleic acid, lecithin, diethylene glycol dioleate, tetrahydrofurfuryl oleate, ethyl oleate, isopropyl myristate, glyceryl trioleate, glyceryl monolaurate, glyceryl monooleate, glyceryl monostearate.
  • oil examples include corn oil, olive oil, cottonseed oil and sunflower oil.
  • an appropriate pharmaceutically acceptable base yellow petrolatum, white petrolatum, paraffin, plastibase, silicone, white ointment, beeswax, pig oil, vegetable oil, hydrophilic ointment, hydrophilic petrolatum, purified lanolin, hydrolyzed lanolin , Water-absorbing ointment, hydrophilic plastibase, macrogol ointment, etc.
  • Inhalants can be manufactured according to conventional methods. That is, the aptamer and the complex of the present invention can be produced by making a powder or liquid, blending in an inhalation propellant and / or carrier, and filling an appropriate inhalation container.
  • the aptamer and complex of the present invention are powder, a normal mechanical powder inhaler can be used, and when it is liquid, an inhaler such as a nebulizer can be used.
  • the propellant conventionally known ones can be widely used.
  • the dose of the medicament of the present invention varies depending on the type / activity of the active ingredient, the severity of the disease, the animal species to be administered, the drug acceptability of the administration target, body weight, age, etc.
  • the amount of active ingredient may be about 0.0001 to about 100 mg / kg, such as about 0.0001 to about 10 mg / kg, preferably about 0.005 to about 1 mg / kg.
  • the present invention also provides a solid phase carrier on which the aptamer and complex of the present invention are immobilized.
  • the solid phase carrier include a substrate, a resin, a plate (eg, multiwell plate), a filter, a cartridge, a column, and a porous material.
  • the substrate may be one used for DNA chips, protein chips, etc., for example, nickel-PTFE (polytetrafluoroethylene) substrate, glass substrate, apatite substrate, silicone substrate, alumina substrate, etc. And the like coated with a polymer or the like.
  • the resin examples include agarose particles, silica particles, copolymers of acrylamide and N, N′-methylenebisacrylamide, polystyrene-crosslinked divinylbenzene particles, particles obtained by crosslinking dextran with epichlorohydrin, cellulose fibers, and allyldextran.
  • examples include N, N'-methylenebisacrylamide cross-linked polymers, monodisperse synthetic polymers, monodisperse hydrophilic polymers, sepharose, and Toyopearl.
  • resins in which various functional groups are bonded to these resins. .
  • the solid phase carrier of the present invention can be useful for, for example, purification of NGF and detection and quantification of NGF.
  • the aptamer and complex of the present invention can be immobilized on a solid support by a method known per se.
  • an affinity substance for example, those described above
  • a predetermined functional group is introduced into the aptamer (hydrophobic substance-added aptamer) and complex of the present invention, and then the affinity substance or the predetermined functional group is used.
  • the method of immobilizing on a solid support is mentioned.
  • the present invention also provides such a method.
  • the predetermined functional group may be a functional group that can be subjected to a coupling reaction, and examples thereof include an amino group, a thiol group, a hydroxyl group, and a carboxyl group.
  • the present invention also provides an aptamer having such a functional group introduced therein.
  • the present invention also provides methods for purification and concentration of NGF.
  • the present invention can separate NGF from other family proteins.
  • the purification and concentration method of the present invention can include adsorbing NGF to the solid phase carrier of the present invention and eluting the adsorbed NGF with an eluent.
  • Adsorption of NGF to the solid phase carrier of the present invention can be carried out by a method known per se. For example, a sample containing NGF (eg, bacterial or cell culture or culture supernatant, blood) is introduced into the solid phase carrier of the present invention or a content thereof. NGF can be eluted using an eluent such as a neutral solution.
  • NGF eg, bacterial or cell culture or culture supernatant, blood
  • the neutral eluate is not particularly limited, and may be, for example, a pH of about 6 to about 9, preferably about 6.5 to about 8.5, more preferably about 7 to about 8.
  • Neutral solutions also include, for example, urea, chelating agents (eg, EDTA), potassium salts (eg, KCl), magnesium salts (eg, MgCl 2 ), surfactants (eg, Tween 20, Triton, NP40), glycerin. May be included.
  • the purification and concentration method of the present invention may further comprise washing the solid phase carrier with a washing solution after NGF adsorption.
  • the cleaning solution examples include urea, a chelating agent (eg, EDTA), a tris, an acid, an alkali, a transfer RNA, DNA, a surfactant such as Tween 20, and a salt containing a salt such as NaCl.
  • a chelating agent eg, EDTA
  • a tris an acid, an alkali, a transfer RNA, DNA, a surfactant such as Tween 20, and a salt containing a salt such as NaCl.
  • the purification and concentration method of the present invention may further include heat-treating the solid phase carrier. By this process, the solid phase carrier can be regenerated and sterilized.
  • the present invention also provides a method for detecting and quantifying NGF.
  • the present invention can detect and quantify NGF separately from other family proteins.
  • the detection and quantification method of the present invention can include measuring NGF utilizing the aptamer of the present invention (eg, by using the complex of the present invention and a solid phase carrier).
  • the method for detecting and quantifying NGF can be performed by the same method as the immunological method except that the aptamer of the present invention is used instead of the antibody.
  • enzyme immunoassay eg, direct competitive ELISA, indirect competitive ELISA, sandwich ELISA
  • radioimmunoassay (RIA) radioimmunoassay
  • fluorescent immunoassay Detection and quantification can be performed by the same method as the method (FIA), Western blot method, immunohistochemical staining method, cell sorting method and the like. It can also be used as a molecular probe such as PET.
  • a method may be useful, for example, for measuring the amount of NGF in a biological or biological sample, or diagnosing a disease associated with NGF.
  • aptamers represented by aptamer IDs 1 to 25 and aptamer IDs 27 to 54 are transcribed to aptamer IDs 26, 26 (1) to (72), 29 (1) and aptamer IDs 55 to 54.
  • the aptamer represented by 63 was obtained by chemical synthesis. Transcription was carried out by preparing DNA of the target aptamer by chemical synthesis and using DuraScript (registered trademark) T7 transcription kit (manufactured by Epicentre). The RNA obtained by this method is one in which the 2 ′ position of ribose of the pyrimidine nucleotide is fluorinated. The transcript was treated with DNase, then protein was removed by phenol / chloroform treatment, and recovered by ethanol precipitation. The purity of the collected aptamer was confirmed by polyacrylamide electrophoresis, and the amount was confirmed by absorbance measurement.
  • An aptamer having a polyethylene glycol chain (PEG) added to the 5 'end or 3' end was synthesized as follows. First, an aptamer to which a linker having an amino group was added at the 5 'end or 3' end was synthesized using a nucleic acid synthesizer. For the 5 'end, ssH Linker (SAFC) or DMS (O) MT-AMINO-MODIFIER C6 (GLENRESERCH) was used, and for the 3' end, TFA Amino C-6 lcaa CPG (ChemGenes) was used. The aptamers to which these amino groups were added were purified by HPLC and then analyzed for purity by HPLC and MALDI-TOFMS.
  • SAFC ssH Linker
  • DMS O
  • MT-AMINO-MODIFIER C6 GLENRESERCH
  • TFA Amino C-6 lcaa CPG ChemGenes
  • these aptamers are branched GS type PEG having a molecular weight of 40000 (SUNBRIGHT GL2-400GS2 made by NOF), to which an active group of N-hydroxysuccinimide is added, and bibranched TS type PEG having a molecular weight of 40000 (SUNBRIGHT GL2-400TS made by NOF ), 4-branched TS type PEG (SUNBRIGHT GL4-400TS, manufactured by NOF) with a molecular weight of 40000, 2-branched TS type PEG (SUNBRIGHT GL2-800TS, manufactured by NOF) with a molecular weight of 80000, or 4-branched TS type PEG (SUNBRIGHT GL4 with a molecular weight of 80000) -800TS (manufactured by NOF) and reacted at room temperature, and PEG and aptamer were linked by an amide bond. After completion of the reaction, purification and purity analysis were performed by HPLC.
  • Table 1 below shows the nucleotides of the aptamers represented by the actually obtained aptamer IDs 1 to 54.
  • the linkage between nucleotides is a phosphodiester linkage.
  • Lower case letters indicate RNA, upper case letters indicate DNA, and s indicates a phosphorothioate bond.
  • the parentheses in the nucleotide indicate modifications at the 2 ′ position of the ribose, F represents a fluorine atom, M represents an O-methyl group, and L represents a Locked Nucleic Acid (LNA).
  • LNA Locked Nucleic Acid
  • Ta is a linker part when ssH linker is used for linking PEG and aptamer
  • Tb is a linker part when DMS (O) MT-AMINO-MODIFIER C6 is used for linking PEG and aptamer
  • Tc is The linker moiety when TFA Amino C-6 is used for linking PEG and aptamer is shown.
  • idT indicates inverted dT.
  • PEG40GS2 has a molecular weight of 40,000 (SUNBRIGHT GL2-400GS2 made by NOF), PEG40TS2 has a molecular weight of 40,000 (SUNBRIGHT GL2-400TS made by NOF), and PEG40TS4 has a molecular weight of 40000, four-branched TS type (SUNBRIGHT) -400TS NOF), PEG80TS2 is a bi-branched TS type (SUNBRIGHT GL2-800TS made by NOF) with a molecular weight of 80000, and PEG80TS4 is a 4-branched TS type (SUNBRIGHT GL4-800TS made by NOF) with a molecular weight of 80000.
  • Aptamer ID Aptamers represented by 1 to 30 contain the common sequence UGAAAGAAACC (SEQ ID NO: 67).
  • the aptamers represented by aptamer IDs 31 to 51 include the common sequence CGAACAAAACU (SEQ ID NO: 68).
  • the aptamers represented by the aptamer IDs: 52, 53 and 54 include the common sequences UGAAAAAAAACC (SEQ ID NO: 66) and CGAAAGAAAACU (SEQ ID NO: 69), respectively.
  • Table 2 below shows the aptamers represented by the actually obtained aptamer IDs: 55 to 63.
  • the linkage between nucleotides is a phosphodiester linkage.
  • Lowercase letters indicate RNA
  • uppercase letters indicate DNA
  • parentheses in nucleotides indicate modifications at the 2 'position of the ribose
  • F represents a fluorine atom
  • M represents an O-methyl group.
  • s represents a phosphorothioate bond.
  • g (M) sT is described below, it means that g and T modified at the 2'-position with an O-methyl group are linked by a phosphorothioate bond.
  • Chol represents cholesterol
  • idT represents inverted dT.
  • Aptamers represented by aptamer IDs 55 to 63 are characterized by having cholesterol at the 5 'end.
  • Example 2 RNA aptamer that binds to NGF Aptamer ID prepared in Example 1: 1 to 63 (however, aptamer ID that is a PEGylated aptamer: 26 (16), (17), (64) to (72 The binding activity of the aptamer represented by () to NGF was evaluated by the surface plasmon resonance method.
  • BIAcore 2000 manufactured by BIAcore was used as a measuring device, and CM5 that reacts with an amino group was used as a sensor chip.
  • Human NGF was dissolved in an immobilization solution (10 mM sodium acetate, pH 6) to a concentration of 25 to 40 ⁇ g / ml.
  • Ethyl-3-carbohydrate hydrochloride and N-hydroxysuccinimide were used for the reaction of the amino group on the protein side and the carboxyl group on the chip side. After the reaction, blocking with ethanolamine-HCl was performed. The amount of NGF immobilized was 3,000 to 4,000 RU.
  • the aptamer for the analyte was prepared at 0.15 ⁇ M to 0.5 ⁇ M.
  • Solution A was used as the running buffer.
  • the solution A is a mixed solution of 145 mM sodium chloride, 5.4 mM potassium chloride, 1.8 mM calcium chloride, 0.8 mM magnesium chloride, 20 mM Tris (pH 7.6), and 0.05% Tween 20.
  • a mixed solution of 1M NaCl and 50 mM NaOH was used as a regeneration solution.
  • NGF was immobilized on FC2, and the final sensorgram was obtained by subtracting the FC1 result.
  • aptamer ID is represented by 1 to 63 (excluding aptamer IDs that are PEGylated aptamers: 26 (16), 26 (17), and 26 (64) to 26 (72)). All of the aptamers were found to bind significantly to NGF.
  • FIG. 1 shows how NGF binds to aptamers represented by aptamer IDs: 26, 48, and 57.
  • the aptamer represented by aptamer ID: 26 ( ⁇ ) is obtained by changing the 19th g of the aptamer represented by aptamer ID: 26 to O-methyl modified g. It has been found that when g is modified with g in the consensus sequence shown below, physiological activity is greatly reduced. From the above, it was shown that the aptamers represented by aptamer IDs 1 to 63 are aptamers that specifically bind to NGF.
  • aptamers represented by the aptamer IDs obtained in Example 1: 1 to 8, 26 (2), 31 to 38, 52 to 56, 61, 63 inhibit the binding between NGF and the NGF receptor (TrkA)
  • TrkA NGF receptor
  • BIAcore Protein A (21181, PIERCE) was immobilized on a CM5 sensor chip.
  • human TrkA-Fc (175-TK, R & D systems) fused with the Fc portion of IgG was immobilized to about 500 to 700 RU.
  • NGF 0.1 ⁇ M
  • aptamer 0.2 ⁇ M
  • the aptamer inhibits the binding of NGF and TrkA, the signal of the sensorgram does not increase, but if it does not inhibit, a tripartite complex is formed and the signal is expected to increase.
  • the aptamer may be detached and NGF may bind to the receptor. It was confirmed that NGF bound to TrkA before starting the inhibition experiment.
  • the binding amount of NGF and NGF receptor not containing an aptamer was defined as 100, and the binding amount of NGF and NGF receptor when an aptamer was added was determined as a correction value.
  • the binding amount was the RU value at the peak top of the BIAcore sensorgram (the RU value immediately after the end of NGF injection).
  • the value obtained by subtracting this correction value from 100 was defined as% inhibitory activity, and 90% or more was defined as having inhibitory activity.
  • aptamers represented by aptamer IDs: 1 to 8, 26 (2), 31 to 38, 52 to 56, 61, 63 inhibit the binding between NGF and TrkA.
  • Similar experiments were performed on another receptor, P75 (p75-Fc; R & D systems).
  • P75 p75-Fc; R & D systems
  • Example 3 Aptamer neurite outgrowth inhibitory activity Neurosplen-1 cells, a subclone of PC12 cells, were used to evaluate the neurite outgrowth inhibitory activity of the aptamer obtained in Example 1.
  • a 96-well flat bottom plate coated with collagen type IV 2500 cells per well were cultured in RPMI-1640 medium containing 2.5% horse serum and 1.25% fetal bovine serum for 1 day.
  • Human NGF final concentration 1.1 nM or 0.38 nM
  • aptamer final concentration 500 to 0.01 nM
  • Thermo Scientific Two days later, the cytoplasm and nucleus were stained using Cellomics Neuroouthout Kit (Thermo Scientific), and the neurite length per cell was measured by Cellomics ArrayScan VTI (Thermo Scientific). The neurite length per cell obtained when NGF alone was added was 0% inhibitory activity, and the neurite length per cell obtained by culturing for 2 days without NGF was taken as 100% inhibitory activity. And the aptamer inhibitory activity were calculated from the neurite length per cell obtained by adding and adding aptamer. When the inhibitory activity was 0 or less, it was set to 0%. The 50% inhibitory concentration (IC50) was determined from the concentrations at the upper and lower points sandwiching the 50% inhibitory activity. The results of the experiment are shown in Tables 3-1 to 3-3.
  • an IC50 value of “ ⁇ X” indicates that the inhibitory activity was 50% or more when the stated concentration X was the lowest measured concentration. Indicates that the inhibitory activity was 50% or less when the described concentration X was the highest measured concentration.
  • the value indicated by * is when the NGF concentration is 0.38 nM, and the other values are when the NGF concentration is 1.1 nM.
  • the numerical value in the parenthesis is the IC50 value described in PCT / JP09 / 066457.
  • aptamers having a high activity with an IC50 of 10 nM or less including aptamers with an IC50 of 1 nM or less, and further aptamers with an IC50 of 0.3 nM or less. It was.
  • aptamers of aptamer ID: 26 (18) and later were aptamers having an IC50 value of 0.3 nM or less and 0.3 nM.
  • Example 4 Aptamer cell growth inhibitory activity (TF-1 assay) The inhibitory activity of the aptamer obtained in Example 1 was evaluated by a growth inhibition evaluation system using TF-1 cells.
  • Two NGF receptors (human TrkA and human p75) genes were introduced into TF-1 cells (ATCC Number: CRL-2003), a human erythroleukemia cell line, using a retroviral vector, and the two receptors were stabilized simultaneously. Highly expressing cells were produced. The cells were suspended in RPMI-1640 medium containing 20% fetal bovine serum, and 1000 (50 ⁇ L) cells were seeded per well in a white 96-well flat bottom plate.
  • the inhibitory activity of the aptamer was calculated from the amount of luminescence per well obtained when NGF and the aptamer were mixed and added. When the inhibitory activity was 0 or less, it was set to 0%.
  • the 50% inhibitory concentration (IC50) was determined from the concentrations at the upper and lower points sandwiching the 50% inhibitory activity. The results are shown in Tables 4-1 to 4-3. An IC50 value described as “ ⁇ X” indicates that the inhibitory activity was 50% or more when the described concentration X was the lowest measured concentration, and an IC50 value described as “> X” Indicates that the inhibitory activity was 50% or less when the stated concentration X was the highest measured concentration.
  • aptamers having a high activity with an IC50 of 10 nM or less including aptamers with an IC50 of 1 nM or less, and further aptamers with an IC50 of 0.3 nM or less. It was.
  • aptamers other than aptamer ID: 26 (36), 26 (37), 26 (40) show IC50 values of 0.3 nM or less in cell growth inhibition experiments. These aptamers were found to have high inhibitory activity against NGF.
  • Example 5 Comparison with the NGF aptamer described in the prior literature Comparison of the binding activity and neurite outgrowth inhibitory activity of the NGF aptamer described in the prior literature (Binkley J et al., (1995) Nucleic Acids Res. 23, 3198) went. All aptamers described in the prior art are unmodified RNAs and none match the sequences described herein. As aptamers described in the prior literature, H1, L2, and L6 having high binding activity were selected and prepared by transcription with T7 polymerase. The binding activity was evaluated in the same manner as in Example 2.
  • the value obtained by dividing the maximum RU value when the aptamer represented by SEQ ID NO: 57 is bound to NGF by the molecular weight is defined as 100%, “++” for 80% or more, “+” for 50% or more, 50% In the following cases, “ ⁇ ” was used.
  • the obtained RU value was corrected by dividing by the molecular weight.
  • the neurite outgrowth inhibitory activity was evaluated in the same manner as in Example 3. The results are shown in Table 5. As a result of the experiment, L2 and L6 did not show significant binding. When L2 or L6 was immobilized and binding to NGF was observed, binding was observed.
  • the affinity of L2 and L6 to NGF was reduced by immobilizing NGF.
  • the aptamer of the present invention has a high neurite outgrowth inhibitory activity, while H1, L2, and L6 do not inhibit neurite outgrowth even at 500 nM.
  • Example 6 Comparison with the NGF aptamer described in WO02 / 077262
  • the binding activity, neurite outgrowth inhibitory activity and cell growth inhibitory activity of the NGF aptamer described in WO02 / 077262 were measured and specified in the present invention. It compared with the aptamer represented by aptamer ID: 26 (19).
  • aptamer ID 26 (19).
  • Seq ID No. 38 and 42 were chosen as an NGF aptamer described in WO02 / 077262.
  • the binding activity was evaluated by the same method as in Example 2 using the surface plasmon resonance method.
  • the value obtained by dividing the maximum RU value when aptamer represented by aptamer ID: 26 (19) binds to NGF by the molecular weight is defined as 100%, “++” for 80% or more, and “79” for 79-51%. When “+” is 50% or less, “ ⁇ ” is used.
  • the obtained RU value was corrected by dividing by the molecular weight.
  • the neurite outgrowth inhibitory activity and cell growth inhibitory activity were evaluated in the same manner as in Examples 3 and 4. The results are shown in Table 6.
  • the binding activity of the NGF aptamer described in WO02 / 076262 was extremely low as compared with the aptamer of the present invention.
  • the aptamer of the present invention showed high inhibitory activity, whereas the aptamer described in WO02 / 077262 showed no inhibitory activity.
  • Example 7 Cross-reactivity with other neurotrophins
  • Neurotrophin is a collective term for NGF-related gene families, including BDNF (brain-derived neurotrophic factor), NT-3 (neurotrophin-3), NT -4/5 (neurotrophin-4 / 5) is known.
  • BDNF brain-derived neurotrophic factor
  • NT-3 neurotrophin-3
  • NT -4/5 neurotrophin-4 / 5
  • Trk also forms a family, and there are three types: TrkA, which is a receptor for NGF
  • TrkB which is a receptor for BDNF and NT-4 / 5
  • TrkC which is a receptor for NT-3.
  • the aptamer specified in the present invention has high binding activity and inhibitory activity against NGF, but the activity against other neurotrophins was examined.
  • the surface plasmon resonance method was used in the same manner as in 2. As a result, no binding to NT-3 was observed. It was also found that the detachment rate was very high for BDNF and NT-4 / 5, which was clearly lower than the binding activity for NGF.
  • aptamers represented by aptamer IDs: 26 (2), 52, 63 to 65 against BDNF, NT-3, and NT-4 / 5 was evaluated by a growth inhibition assay using TF-1 cells.
  • Human receptor genes (TrkB, TrkC, p75) for each neurotrophic factor are introduced into TF-1 cells (ATCC Number: CRL-2003), which is a human erythroleukemia cell line, using a retroviral vector, and their receptors was stably produced.
  • TF-1 cells introduced with TrkB and p75 were used for evaluating inhibitory activity against BDNF
  • TF-1 cells introduced with TrkC and p75 were used for evaluating NT-3
  • TrkB was used for evaluating NT-4 / 5.
  • TF-1 cells into which only was introduced were used. These cells were suspended in RPMI-1640 medium containing 20% fetal bovine serum, and 1000 (50 ⁇ L) cells were seeded per well in a white 96-well flat bottom plate. Human BDNF (final concentration 0.074 nM) or NT-3 (final concentration 0.074 nM) or NT-4 / 5 (final concentration 0) previously reacted in serum-free RPMI-1640 medium at room temperature for 30 minutes.
  • the amount of luminescence per well obtained by culturing cells for 3 days with the addition of BDNF, NT-3, or NT-4 / 5 alone was 0% inhibitory activity, and 3 with no addition of BDNF, NT3, or NT-4 / 5
  • the amount of luminescence per well obtained by culturing for a day was defined as 100% inhibitory activity. Inhibitory activity was calculated. When the inhibitory activity was 0 or less, it was set to 0%.
  • the 50% inhibitory concentration (IC50) was determined from the concentrations at the upper and lower points sandwiching the 50% inhibitory activity. The results are shown in Table 7.
  • IC50 value described as “> X” indicates that the inhibitory activity was 50% or less when the described concentration X was the highest measured concentration. All aptamers measured had an IC50 of 1000 nM or higher for BDNF and NT-3. Also, for NT-4 / 5, the IC50 was 300 nM or more. From the above results, it was found that these aptamers specifically inhibit NGF.
  • Example 8 Analgesic action by NGF aptamer
  • a thermal hyperalgesia model caused by NGF subcutaneous administration to the rat hind limb was used.
  • Jcl SD rats (6 weeks old) were used.
  • the response latency of escape behavior with respect to infrared irradiation of the limb sole from the plantar thermal stimulation measuring device was used. Acclimatization to the evaluation system was performed the day before the test. Escape behavior response latency was measured before administration on the test day, and an individual having a duration of 10 seconds or more and less than 20 seconds was used.
  • Recombinant human beta-NGF (R & D Systems, final concentration) in Vehicle (20 mM Tris-HCl (pH 7.6), 145 mM NaCl, 5.4 mM KCl, 0.8 mM MgCl 2 , 1.8 mM CaCl 2 , 0.1% BSA) 50 ⁇ g / ml) and the test substance were mixed, incubated at room temperature for 30 minutes, subcutaneously administered at 10 ⁇ l to the left hind limb bottom, and escape behavior latency was measured after 3 and 5 hours.
  • the anti-NGF aptamer represented by aptamer ID: 26 (2) was administered at final concentrations of 0.5, 5, 10 mg / ml (molar ratio to NGF: about 10, 100, 200 times).
  • the escape behavior response latency was significantly smaller in the NGF group than in the Vehicle group.
  • the escape behavior response latency of the 5, 10 mg / ml aptamer ID: 26 (2) administration group was significantly larger than that of the administration group of NGF alone (p ⁇ 0.05), and 5 hours after administration.
  • the escape behavior response latency of the 0.5, 5, 10 mg / ml aptamer ID: 26 (2) administration group was greater than that of the NGF only administration group (p ⁇ 0.01). From this, it was shown that an anti-NGF aptamer has an analgesic action against NGF-induced pain.
  • Example 9 Analgesic Action in Postoperative Pain Model with NGF Aptamer A postoperative pain model in which thermal hyperalgesia is induced was used to investigate the efficacy of NGF aptamer therapy.
  • Crl CD (SD) rats (5 weeks old) were used for the experiment. The tip of the catheter was placed in the femoral vein, and the other tip was exposed outside the body from the back of the rat. One week later, Quick connect infusion system (Strategic applications incorporated) was attached to the rats, and thermal hyperalgesia was evaluated after another week.
  • the response latency of escape behavior with respect to infrared irradiation of the limb sole from the plantar thermal stimulation measuring device was used. Acclimatization to the evaluation system was performed 3 days before the start of the test. The escape behavior response latency was measured on the test start date, and an individual having a duration of 10 seconds to less than 20 seconds was used.
  • the anti-NGF aptamer represented by aptamer ID: 26 (66) dissolved in physiological saline was continuously administered intravenously at 13.61 mg / 240 ml / kg / 96 hr using a syringe pump (manufactured by Terumo) (note that The mass of the aptamer is a mass corresponding to a portion not containing PEG).
  • Vehicle was similarly administered.
  • One hour after the start of administration the skin and fascia at the bottom of the right hind limb were incised, the flexor muscle was vertically divided into two, and the skin was sutured.
  • the escape behavior response latency after 1, 2, 3, and 4 days of administration / incision was significantly smaller than before administration / incision (p ⁇ 0.01).
  • the escape behavior response latency of the aptamer administration group with aptamer ID: 26 (66) was significantly greater than that of the Vehicle group (1, 2, 4 days later: p ⁇ 0.01, after 3 days: p ⁇ 0.05). This indicates that anti-NGF aptamer has an analgesic action on a postoperative pain model.
  • the aptamer and complex of the present invention may be useful as a medicine for diseases such as pain and inflammatory diseases, or as a diagnostic agent or reagent.
  • the aptamers and complexes of the present invention may also be useful for NGF purification and enrichment, and NGF detection and quantification.

Abstract

 NGFに対する結合活性を有する、より良質なアプタマーの提供。 以下の(1)および(2)を満たすNGFに結合するアプタマー: (1)UGAAARAAACC(配列番号64)またはCGAAMRAAACU(配列番号65)で表される配列を含む。 (2)塩基長が73以下である。

Description

NGFに対するアプタマー及びその使用
 本発明は、NGFに対するアプタマー及びその利用方法などに関するものである。
 神経成長因子NGF(nerve growth factor)は1951年に同定された最初のニューロトロフィンであり、末梢および中枢ニューロンの発達・生存に係わる重要な分泌タンパク質である。118個のアミノ酸からなり、分子量は13kDaで、分子内に3ヶ所のS-S結合を有する。ファミリータンパク質にBDNF、NT-3、NT-4/5が存在し、これらは構造上よく保存されており、非共有結合によるホモ二量体を形成する。3つの別方向を向いたβシート構造を持ち、この部分で二量体化していると考えられている。またファミリー間でホモロジーの低い4つのループ構造をもち、この部分が受容体に対する特異性を規定していると考えられている。
 NGFの受容体には高親和性のチロシンキナーゼ型受容体TrkAと低親和性の腫瘍壊死因子受容体スーパーファミリーに属するp75が知られている。これらの受容体はホモ二量体もしくはヘテロ二量体として作用し神経系の発生と維持に深く係わっている。TrkAは一回膜貫通型受容体で細胞内ドメインにチロシンキナーゼ構造を持つ。NGFが結合するとチロシンリン酸化が起こり、下流にシグナルが伝わり、その細胞の分化促進や生存維持に働く。
 TrkAのファミリー受容体としてTrkBとTrkCが知られている。TrkBはBDNFおよびNT-4/5と結合し、TrkCはNT-3と結合する。p75はTrkAに比べてリガンド特異性が低く、NGF以外にもBDNF、NT-3、NT-4/5と結合する。p75は一回膜貫通型受容体であるが、細胞質側にチロシンキナーゼドメインはない。TrkA同様、神経細胞だけでなく非神経細胞にも発現している。この受容体は細胞の分化促進や生存維持に関与しているほか、アポトーシスの誘導や細胞遊走とも関係していることが知られている。結晶構造解析の結果から、ホモ二量体のNGFはTrkAと2:2で結合するが、p75とは2:1で結合することが示唆された。ホモ二量体のNGFがTrkAとp75のヘテロ二量体に結合することもある。
 NGFはシュワン細胞、角化細胞、気管支上皮細胞、線維芽細胞、Tリンパ球、マクロファージ、肥満細胞、Bリンパ球、ケラチノサイト、平滑筋細胞、腎糸球体細胞、骨格筋細胞などにより産生される。一方、TrkAは神経細胞のほか、神経細胞以外の単球、Tリンパ球、Bリンパ球、肥満細胞にも発現していることが知られている。p75も同様に神経細胞だけでなく非神経細胞にも発現している。
 NGFは神経系において重要な役割を担っていることはよく知られている。コリン作動性ニューロンの生存を維持する作用を有することが明らかにされており、アルツハイマー病と何らかの関連があると考えられている。また、老齢ラットの脳内にNGFを投与すると、記憶障害の改善が認められることから、老人性痴呆の治療薬としても期待されている。
 NGFは神経系以外の組織や細胞にも作用し、生体防御や組織修復過程に関与していることがわかっている。例えば、NGFを動物に投与すると、血管透過性の増大、T細胞やB細胞の免疫応答の増強、リンパ球の分化誘導、肥満細胞の増殖誘導、肥満細胞からの各種サイトカインの放出誘導などが起こることが知られている。
 NGFは炎症と関連があり、炎症性疾患の患者や炎症性動物モデルでNGFの発現上昇が観察されている。例えば、全身性エリテマトーデス、多発性硬化症、乾癬、関節炎、間質性膀胱炎、喘息などがそれに当たる。関節リウマチの患者の滑液中のNGFの濃度が上昇していることが報告されている。また、関節リウマチモデルラットのNGFの発現の向上、関節炎モデルマウスで肥満細胞の増加とNGFの発現の向上が報告されている。
 NGFは痛みと深く関わる。ヒトにNGFを皮下投与すると、筋肉痛のような深部痛が数日続き、注入部位の痛覚過敏が生じる。NGFノックアウトマウスとTrkAノックアウトマウスは無髄神経が欠損し痛みを感じなくなる。成熟ラットに1mg/kgのNGFを腹腔内投与すると、侵害性熱や機械刺激に対する痛覚過敏が生じる。NGFのトランスジェニックマウスは炎症症状を伴わない痛覚過敏を示す。また、先天性無痛無汗症(CIPA)の患者のTrkA遺伝子に異常があること、NGFの遺伝子に異常があると痛覚が低下することが知られている。
 以上より、NGF阻害剤は侵害受容性疼痛、炎症性疼痛、神経因性疼痛、癌性疼痛、線維筋痛などの疼痛の治療薬として利用可能である。NGF抗体とNSAIDの併用療法(特許文献1)、NGF抗体とオピオイド鎮痛剤の併用療法(特許文献2)、NGF抗体を用いた手術後の疼痛の治療法(特許文献3、特許文献4)、NGF抗体を用いた骨癌の疼痛治療法(特許文献5)、NGF抗体を用いた変形性関節炎の疼痛治療法(特許文献6)が報告されている。
 Tanezumab(PF-4383119またはRN624)はNGFに対する抗体で、変形性関節炎モデル動物を用いた疼痛モデル実験で効果を示し、現在臨床試験が行われている。また、NGFとNGF受容体の阻害活性の有無は不明であるが、NGFに結合する天然のRNAに関する報告がある(非特許文献1)。
 ところで、近年、RNAアプタマーの治療薬、診断薬、試薬への応用が注目されており、いくつかのRNAアプタマーが臨床段階あるいは実用化段階に入っている。2004年12月には世界初のRNAアプタマー医薬であるMacugenが加齢黄斑変性症の治療薬として米国で承認された。RNAアプタマーとはタンパク質などの標的物質に特異的に結合するRNAのことで、SELEX(Systematic Evolution of Ligands by Exponential Enrichment)を用いて作製することができる(特許文献7~9)。SELEXとは、1014個程度の異なるヌクレオチド配列を持つRNAのプールから、標的物質に特異的に結合するRNAを選別してくる方法である。使用されるRNAは40残基程度のランダム配列をプライマー配列で挟み込んだ構造をしている。このRNAプールを標的物質と会合させて、フィルターなどを用いて標的物質に結合したRNAのみ回収する。回収したRNAはRT-PCRで増幅し、これを次のラウンドの鋳型として用いる。この作業を10回程度繰り返すことにより、標的物質と特異的に結合するRNAアプタマーを取得することができる場合がある。
 アプタマー医薬は抗体医薬と同様に細胞外因子を標的にすることができるが、既に公表されている多くの学術論文等を参考にすると、いくつかの点で抗体医薬を上回る可能性がある。例えば、アプタマーは抗体よりも結合力と特異性が高い場合が多々ある。また、免疫排除を受けにくく、抗体特有の抗体依存性細胞障害(ADCC)や補体依存性細胞障害(CDC)などの副作用は起こらない。デリバリーの観点では、アプタマーは抗体の1/10程度のサイズであるので、目的の部位まで薬物を送達させることはより容易である。アプタマーは化学合成により生産されるので、各種修飾を容易に入れることができ、大量生産によるコストダウンが可能である。一方で、一般にアプタマーの血中半減期は抗体よりも短い。しかし、この点も毒性を考慮した場合はメリットとなる場合がある。以上の点より、同じ分子を標的にした医薬品であっても、アプタマー医薬は抗体医薬に勝る可能性がある。
 本発明者らは、PCT/JP09/066457において、NGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害するアプタマーを製造し、これがNGFによる神経突起伸長活性を阻害することを見出した。一方、特許文献10には、自動化されたSELEXによって得られたNGFに対するアプタマーが記載されており、また特許文献11には、特許文献10で得られたアプタマーの改変体および修飾体が記載されている。
国際公開WO04/073653号パンフレット 国際公開WO04/096122号パンフレット 国際公開WO04/032870号パンフレット 国際公開WO05/000194号パンフレット 国際公開WO05/111077号パンフレット 国際公開WO06/110883号パンフレット 国際公開WO91/19813号パンフレット 国際公開WO94/08050号パンフレット 国際公開WO95/07364号パンフレット 国際公開WO02/077262号パンフレット 国際公開WO03/070984号パンフレット
Binkley J et al., (1995) Nucleic Acids Res, 23, 3198-3205
 本発明は、NGFに対するアプタマー及びその利用方法などを提供することを目的とする。特に、医薬品用途に適した短鎖長のアプタマーを提供することを目的とする。
 本発明者らは、上記課題を解決するため、鋭意検討した結果、NGFに対するより良質なアプタマーを作製することに成功し、もって本発明を完成するに至った。
 即ち、本発明は、以下の発明などを提供するものである:
[1]以下の(1)および(2)を満たすNGFに結合するアプタマー:
(1)UGAAARAAACC(配列番号64)またはCGAAMRAAACU(配列番号65)で表される配列を含む。
(2)塩基長が73以下である。
[2]NGFとNGF受容体との結合を阻害する、[1]に記載のアプタマー。
[3]NGFの神経細胞突起伸長活性または細胞増殖活性を阻害する、[1]または[2]に記載のアプタマー。
[4]50%阻害濃度が10nM以下である、[3]に記載のアプタマー。
[5]NT-3に結合しない、[1]~[4]のいずれか一に記載のアプタマー。
[6]BDNF、NT-3又はNT-4/5の細胞増殖活性を阻害しない、[1]~[5]のいずれか一に記載のアプタマー。
[7]以下の(a)、(b)又は(c)のいずれかのヌクレオチド配列を含む、[1]または[2]に記載のアプタマー:
(a)配列番号1~54のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい);
(b)配列番号1~54のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)において、1又は数個のヌクレオチドが置換、欠失、挿入あるいは付加されたヌクレオチド配列;又は
(c)配列番号1~54のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)と70%以上の同一性を有するヌクレオチド配列。
[8]少なくとも1つのヌクレオチドが修飾されている、[1]~[7]のいずれか一に記載のアプタマー。
[9]inverted dT又はポリエチレングリコールで修飾されている、[8]に記載のアプタマー。
[10]inverted dT又はポリエチレングリコールが、アプタマーの5’末端または3’末端に結合している、[9]に記載のアプタマー。
[11]各ピリミジンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、[8]~[10]のいずれか一に記載のアプタマー。
[12]各プリンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、[8]~[10]のいずれか一に記載のアプタマー。
[13]配列番号1~54のいずれかから選択されるヌクレオチド配列を含み、塩基長が73以下である核酸。
[14]少なくとも1つのヌクレオチドが修飾されている、[13]に記載の核酸。
[15]inverted dT又はポリエチレングリコールで修飾されている、[14]に記載の核酸。
[16]inverted dT又はポリエチレングリコールが、アプタマーの5’末端または3’末端に結合している、[15]に記載の核酸。
[17]各ピリミジンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、[14]~[16]のいずれか一に記載の核酸。
[18]各プリンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、[14]~[16]のいずれか一に記載の核酸。
[19]NGFに結合する、疎水性物質付加アプタマー。
[20]NGFとNGF受容体との結合を阻害する、[19]に記載のアプタマー。
[21]NGFの神経細胞突起伸長活性または細胞増殖活性を阻害する、[20]に記載のアプタマー。
[22]50%阻害濃度が10nM以下である、[21]に記載のアプタマー。
[23]以下の(a’)、(b’)又は(c’)のいずれかのヌクレオチド配列を含む、[19]または[20]に記載のアプタマー:
(a’)配列番号55~63のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい);
(b’)配列番号55~63のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)において、1又は数個のヌクレオチドが置換、欠失、挿入あるいは付加されたヌクレオチド配列;又は
(c’)配列番号55~63のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)と70%以上の同一性を有するヌクレオチド配列。
[24]疎水性物質がアプタマーの5’末端に結合している、[19]~[23]のいずれか一に記載のアプタマー。
[25]疎水性物質がコレステロールである、[19]~[24]のいずれか一に記載のアプタマー。
[26]少なくとも1つのヌクレオチドが修飾されている、[19]~[25]のいずれか一に記載のアプタマー。
[27]inverted dTで修飾されている、[26]に記載のアプタマー。
[28]inverted dTが、アプタマーの3’末端に結合している、[27]に記載のアプタマー。
[29]各ピリミジンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、[26]~[28]のいずれか一に記載のアプタマー。
[30]各プリンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、[26]~[28]のいずれか一に記載のアプタマー。
[31][1]~[12]、[19]~[30]のいずれか一に記載のアプタマーまたは[13]~[18]のいずれか一に記載の核酸、及び機能性物質を含む複合体。
[32]機能性物質が、親和性物質、標識用物質、酵素、薬物送達媒体又は薬物である、[31]に記載の複合体。
[33][1]~[12]、[19]~[30]のいずれか一に記載のアプタマー、[13]~[18]のいずれか一に記載の核酸、あるいは[31]又は[32]に記載の複合体を含む医薬組成物。
[34][1]~[12]、[19]~[30]のいずれか一に記載のアプタマー、[13]~[18]のいずれか一に記載の核酸、あるいは[31]又は[32]に記載の複合体を含む抗疼痛剤。
[35][1]~[12]、[19]~[30]のいずれか一に記載のアプタマー、[13]~[18]のいずれか一に記載の核酸、あるいは[31]又は[32]に記載の複合体を含む抗炎症剤。
[36][1]~[12]、[19]~[30]のいずれか一に記載のアプタマー、[13]~[18]のいずれか一に記載の核酸、あるいは[31]又は[32]に記載の複合体を、それを必要とする対象に投与することを特徴とする、疼痛又は炎症を伴う疾患を治療又は予防する方法。
[37]疼痛又は炎症を伴う疾患の治療又は予防のための、[1]~[12]、[19]~[30]のいずれか一に記載のアプタマー、[13]~[18]のいずれか一に記載の核酸、あるいは[31]又は[32]に記載の複合体。
 本発明のアプタマー、疎水性物質付加アプタマー及びそれらの複合体は、疼痛や炎症性疾患などの疾患に対する医薬、あるいは診断薬、試薬として有用であり得る。本発明のアプタマー及び複合体はまた、NGFの精製及び濃縮、並びにNGFの検出及び定量に有用であり得る。
アプタマーID:26、48、57で表されるアプタマー(Apt)がヒトNGFに結合することを示すセンサーグラムである。アプタマーID:26(-)は、アプタマーID:26で表わされるアプタマーの一カ所に変異を導入し(g19→g(M))、結合活性を消失させたアプタマーを意味する。
 本発明は、UGAAARAAACC(配列番号64)またはCGAAMRAAACU(配列番号65)で表される配列を含み、かつ塩基長が73以下であることを特徴とする、NGFに結合するアプタマー(以下、「本発明のアプタマー」と記載する)を提供する。
 これらの配列は、後述する修飾を受けていてもよい。
 本発明で提供されるアプタマーは、NGFに対して結合活性を有するアプタマーである。好ましい態様によれば、本発明のアプタマーはNGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害することによって、NGFの活性を阻害し得る。
 アプタマーとは、所定の標的分子に対する結合活性を有する核酸分子をいう。アプタマーは、所定の標的分子に対して結合することにより、所定の標的分子の活性を阻害し得る。本発明のアプタマーは、RNA、DNA、修飾核酸又はそれらの混合物などの核酸であり得る。本発明のアプタマーはまた、直鎖状又は環状の形態の核酸であり得る。
 すなわち以下において、本発明のアプタマーは、「本発明の核酸」と読み替えて表される場合もあり得る。
 本願明細書において「配列番号」で特定される配列とは、各アプタマー又は核酸のヌクレオチド配列を意味し、例えば「配列番号1の配列を含む核酸」とは、配列番号1の配列を含む天然の核酸、修飾核酸またはその両方で構成される核酸を意味する。配列表に各アプタマーの配列番号の塩基配列を記載している。
 NGFは公知のニューロトロフィンであり、末梢および中枢ニューロンの発達・生存に係わる重要な分泌タンパク質である。本発明において、NGFは、特にβタイプのNGFを意味する。ヒトβ-NGFのアミノ酸配列はAccession Number NP002497、P01138、AAI26151、AAI26149、CAB75625で表されるものであるが、変異の入ったものや、そのドメイン、ペプチドであってもよい。また、モノマーだけでなくダイマーや多量体であってもよい。
 本発明のアプタマーは、生理的な緩衝液(例えば溶液A:実施例2参照)中で、NGFへ結合する。本発明のアプタマーは、例えば以下の試験により検出可能な程度の強度で、NGFへ結合する。
 測定にはBIAcore社製のBIAcore2000を用いる。センサーチップにアプタマーを固定化する。固定化量は1000RUとする。0.3MのNaClを含有する生理的な緩衝液(溶液A:実施例2参照)によりNGF溶液(0.5μM)を調製する。このNGF溶液を20μL注入し、NGFのアプタマーへの結合を検出する。40ヌクレオチドからなるランダムなヌクレオチドを含むRNAをネガティブコントロールとし、該コントロールRNAと比較してNGFが有意に強くアプタマーに結合した場合、該アプタマーはNGFへの結合能を有すると判定する。
 本発明のアプタマーは、NGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害することによって、NGFの活性を阻害する。本明細書中、「NGFに対する阻害活性」とはNGFが保有する任意の活性に対する阻害能を意味する。例えば、NGFがNGF受容体に結合することを阻害する活性である。
 また、他の「NGFに対する阻害活性」としては、NGFがNGF受容体に結合することによって生じる、NGF受容体の下流のシグナル伝達(Ras-MAPキナーゼ経路、PI3キナーゼ経路)の阻害、TRPV1、SP、BDNFなどの発現上昇の阻害、肥満細胞などから放出されるHA、BK、PG、NGF、その他サイトカインの発現の阻害活性などが挙げられる。
 更に、NGFにより誘導される神経細胞の分化、生存、神経突起伸長、血管透過性の増大、T細胞やB細胞の免疫応答の増強、リンパ球の分化、肥満細胞や赤白血病細胞、癌細胞など各種細胞の増殖などの阻害、疼痛、痛覚過敏の軽減などが挙げられる。
 本発明のアプタマーが有する好ましい「NGFに対する阻害活性」は、NGFがNGF受容体に結合することを阻害する活性であり、NGFにより誘導される神経突起伸長活性を阻害する活性、NGFにより誘導される細胞増殖活性を阻害する活性などである。
 本明細書中、「NGF受容体」とはNGFが結合する細胞表面タンパク質を意味する。NGF受容体としては、TrkAとp75が知られている。本発明でいうNGF受容体とは、天然のアミノ酸配列を含むタンパク質であってもよいし、その変異体であってもよい。ここで「その変異体」とは、「NGF受容体」のアミノ酸が数個置換されたものやその一部分のアミノ酸配列であって、NGFに対して結合活性を有し、かつNGFとNGF受容体との結合を阻害するタンパク質またはペプチドを意味する。
 本発明のアプタマーは、NGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害するアプタマーである。NGFのNGF受容体への結合をアプタマーが阻害するか否かは、例えば以下の試験により評価することができる。
 測定にはBIAcore社製のBIAcore2000を用いる。CM5センサーチップにNGF受容体とFcとの融合タンパク質(例えば、Trk A-Fc(175-TK,R&D systems)又はp75-Fc(R&D systems)を固定化する。固定化量は500~700RUとする。生理的な緩衝液(溶液A:後述する実施例2参照)中でNGF(0.1μM)とアプタマー(0.2μM)を混合し、30分かけてサンプルとなる混合液を調製する。この混合液をBIAcore2000に注入し、NGFのNGF受容体への結合を検出する。
 阻害活性%が90%以上だった場合、該アプタマーはNGFのNGF受容体への結合を阻害すると判定する。阻害活性%は、アプタマーを含まないNGFとNGF受容体の結合量を0、NGFを含まない溶液をインジェクションした場合の結合量を100として計算される。ここで結合量は、BIAcoreのセンサーグラムのピークトップでのRU値(NGFのインジェクション終了直後のRU値)を意味する。
 一態様において、本発明のアプタマーは、NGFとTrkAとの結合およびNGFとp75との結合を両方阻害し得る。
 本発明のアプタマーは、任意の哺乳動物に由来するNGFに対する阻害活性を有し得る。このような哺乳動物としては、例えば、霊長類(例、ヒト、サル)、げっ歯類(例、マウス、ラット、モルモット)、並びにペット、家畜及び使役動物(例、イヌ、ネコ、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジ、ブタ)が挙げられる。
 本発明のアプタマーは、NGFの任意の部分に結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害し得るものである限り特に限定されない。
 本発明のアプタマーは、UGAAARAAACC(配列番号64)またはCGAAMRAAACU(配列番号65)で表される配列を含むアプタマーである。配列番号65におけるMは、アデノシンまたはシチジンを意味し、配列番号64および65におけるRは、グアノシンまたはアデノシンを意味する。配列番号64に示される配列としては、UGAAAAAAACC(配列番号66)またはUGAAAGAAACC(配列番号67)が例示される。また配列番号65に示される配列としては、CGAACAAAACU(配列番号68)又はCGAAAGAAACU(配列番号69)が例示される。
 これらの配列は、後述する修飾を受けていてもよい。
 また本発明のアプタマーは、塩基長が73以下であることを特徴とする。
 74ヌクレオチド以上のアプタマーは、鎖長が長いことから医薬品用途として適用することが困難である場合が多い。換言すると、総ヌクレオチド数が73以下であれば、アプタマーの化学合成及び大量生産がより容易であり、かつコスト面でのメリットも大きい。また、化学修飾が容易であり、生体内安定性を向上させやすく、毒性が低いと考えられる。
 医薬品用途への適用の観点では、本発明のアプタマーは73ヌクレオチドよりもさらに短い塩基長であることがより望ましく、好ましくは70ヌクレオチド以下であり、より好ましくは50ヌクレオチド以下であり、最も好ましくは45ヌクレオチド以下であり得る。なお一方で、「核酸」部分の総ヌクレオチド数が少なすぎると、NGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害することができなくなる可能性がある。適切な最小ヌクレオチド数は、当業者であれば目的に応じて適宜決定することが可能である。
 また本発明のアプタマーは、NGFに結合し、そして/あるいはNGFとNGF受容体との結合を阻害することによって、NGFの神経細胞突起伸長活性またはNGFの細胞増殖活性を阻害するアプタマーであり得る。NGFの神経細胞突起伸長活性を本発明のアプタマーが阻害するか否かは、実施例3に記載の試験により評価することができる。またNGFの細胞増殖活性を本発明のアプタマーが阻害するか否かは、実施例4に記載の試験により評価することができる。
 また、NGFの神経細胞突起伸長活性またはNGFの細胞増殖活性が50%となる際の、本発明のアプタマー濃度(IC50;50%阻害濃度)は、好ましくは10nM以下であり、より好ましくは1nM以下である。
 本発明のアプタマーに含まれる各ヌクレオチドはそれぞれ、同一又は異なって、リボース(例、ピリミジンヌクレオチドのリボース、プリンヌクレオチドのリボース)の2’位においてヒドロキシル基を含むヌクレオチド(即ち、未置換であるヌクレオチド)であるか、あるいはリボースの2’位において、ヒドロキシル基が、任意の原子又は基で置き換えられているヌクレオチドであり得る。このような任意の原子又は基としては、例えば、水素原子、フッ素原子又は-O-アルキル基(例、-O-Me基)、-O-アシル基(例、-O-CHO基)、アミノ基(例、-NH基)で置き換えられているヌクレオチドが挙げられる。以下にリボースの2’位において、ヒドロキシル基が水素原子、フッ素原子、-O-Me基で置き換えられた場合をそれぞれ示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
 本発明のアプタマーはまた、少なくとも1種(例、1、2、3又は4種)のヌクレオチドが、リボースの2’位において、ヒドロキシル基、又は上述した任意の原子又は基、例えば、水素原子、フッ素原子、ヒドロキシル基及び-O-Me基からなる群より選ばれる少なくとも2種(例、2、3又は4種)の基を含むヌクレオチドであり得る。
 本発明のアプタマーはまた、全てのピリミジンヌクレオチドが、リボースの2’位において、同一または異なって、フッ素原子で置換されるヌクレオチドであるか、又は上述した任意の原子又は基、好ましくは、水素原子、ヒドロキシル基及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子または基で置換されているヌクレオチドであり得る。
 本発明のアプタマーはまた、全てのプリンヌクレオチドが、リボースの2’位において、同一または異なって、ヒドロキシル基で置換されるヌクレオチドであるか、又は上述した任意の原子又は基、好ましくは、水素原子、メトキシ基及びフッ素原子からなる群より選ばれる原子または基で置換されるヌクレオチドであり得る。
 本発明のアプタマーはまた、全てのヌクレオチドが、リボースの2’位において、ヒドロキシル基、又は上述した任意の原子又は基、例えば、水素原子、フッ素原子、ヒドロキシル基及び-O-Me基からなる群より選ばれる同一の基を含むヌクレオチドであり得る。
 尚、本明細書においては、アプタマーを構成するヌクレオチドをRNAと仮定して(すなわち糖基をリボースと仮定して)、ヌクレオチド中の糖基への修飾の態様を説明するが、これは、アプタマーを構成するヌクレオチドからDNAが除外されることを意味するものではなく、適宜DNAへの修飾として読み替えられる。例えば、アプタマーを構成するヌクレオチドがDNAである場合、リボースの2’位のヒドロキシル基のXへの置き換えは、デオキシリボースの2’位の一方の水素原子のXへの置き換えとして読み替えられる。
 なお本発明のアプタマーにおいて、ウラシルをチミンに置換することによって、NGFに対する結合性、NGFとNGF受容体との結合阻害活性、NGFの神経細胞突起伸長阻害活性、NGFの細胞増殖阻害活性、アプタマーの安定性、薬物送達性、血液中での安定性等を高めることが可能である。
 あるいは、本発明のアプタマーは、ニューロトロフィン3(以下NT-3と記載する)への結合活性を有さないことを特徴とする。ここでNT-3への結合活性を有さないとは、種々の結合アッセイにおいて、それぞれのタンパク質と本発明のアプタマーとの結合が検出限界以下であることを意味する。具体的には、例えば、表面プラズモン共鳴のセンサーグラムにおいて、レスポンスが得られないことを意味し、実施例7に記載の方法で測定することができる。
 あるいは、本発明のアプタマーは、NGF以外の他のニューロトロフィン、具体的には、脳由来神経栄養因子(Brain-derived neurotrophic factor:以下BDNFと記載する)、NT-3およびニューロトロフィン4/5(以下NT-4/5と記載する)の細胞増殖活性を阻害しないことを特徴とする。ここで他のニューロトロフィン(BDNF、NT-3、NT-4/5)の細胞増殖活性を阻害するか否かは、実施例7に記載の試験により評価することができる。BDNF、NT-3又はNT-4/5の細胞増殖活性を阻害しないとは、例えば、本発明のアプタマーが各ニューロトロフィンの細胞増殖を50%阻害するために必要な本発明のアプタマー濃度(IC50;50%阻害濃度)が、BDNF及びNT-3については100nM以上、好ましくは300nM以上、より好ましくは1000nM以上であることをいい、NT-4/5については100nM以上、好ましくは300nM以上であることをいう。
 本発明のアプタマーのさらに好ましい態様として、BDNF、NT-3及びNT-4/5の細胞増殖活性を阻害しないアプタマーを挙げることが出来る。
 本明細書においてBDNF、NT-3及びNT-4/5の用語は、それぞれヒトを含む、全哺乳類種のBDNF、NT-3及びNT-4/5を意味する。
 本発明のアプタマーはまた、
(a)配列番号1~54のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)を含むアプタマー;
(b)配列番号1~54のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)において1又は数個のヌクレオチドが置換、欠失、挿入あるいは付加されたヌクレオチド配列を含むアプタマー;
(c)配列番号1~54のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)と70%以上(好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、最も好ましくは95%以上)の同一性を有するヌクレオチド配列を含むアプタマー;或いは
(d)上記(a)の複数の連結物、上記(b)の複数の連結物、上記(c)の複数の連結物、上記(a)、(b)及び(c)の複数の連結物からなる群より選ばれる連結物であり得る。
 上記(b)~(d)のアプタマーは、NGFに結合し且つ/又はNGFの活性(NGF受容体との結合活性等)を阻害し得る。
 また好ましくは、上記(b)~(d)のアプタマーは、NGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害するアプタマー、および/またはNGFに結合し、NGFの神経細胞突起伸長活性または細胞増殖活性を阻害するアプタマーである。
 さらに好ましくは、上記(b)~(d)のアプタマーは、NGFの神経細胞突起伸長または細胞増殖活性の阻害濃度が10nM以下であるアプタマーであり、より好ましくは、NGFの神経細胞突起伸長または細胞増殖活性の阻害濃度が1nM以下であるアプタマーである。
 上記(b)において、置換、欠失、挿入又は付加されるヌクレオチド数は、アプタマーがNGFに結合し、NGFの活性(NGF受容体との結合活性等)を阻害し得、またアプタマー自体のヌクレオチド数が73を超えない限り特に限定されないが、例えば約30個以下、好ましくは約20個以下、より好ましくは約10個以下、さらにより好ましくは5個以下、最も好ましくは4個、3個、2個又は1個であり得る。
 上記(c)において、「同一性」とは、当該技術分野において公知の数学的アルゴリズムを用いて2つのヌクレオチド配列をアラインさせた場合の、最適なアラインメント(好ましくは、該アルゴリズムは最適なアラインメントのために配列の一方もしくは両方へのギャップの導入を考慮し得るものである)における、オーバーラップする全ヌクレオチド残基に対する、同一ヌクレオチド残基の割合(%)を意味する。
 ヌクレオチド配列における同一性は、例えば相同性計算アルゴリズムNCBI BLAST-2(National Center for Biotechnology Information Basic Local Alignment Search Tool)を用い、以下の条件(ギャップオープン=5ペナルティ;ギャップエクステンション=2ペナルティ;x_ドロップオフ=50;期待値=10;フィルタリング=ON)にて2つのヌクレオチド配列をアラインすることにより、計算することができる。
 上記(d)において連結はタンデム結合にて行われ得る。また、連結に際し、リンカーを利用してもよい。リンカーとしては、ヌクレオチド鎖(例、1~約20ヌクレオチド)、非ヌクレオチド鎖(例、-(CH-リンカー、-(CHCHO)-リンカー、ヘキサエチレングリコールリンカー、TEGリンカー、ペプチドを含むリンカー、-S-S-結合を含むリンカー、-CONH-結合を含むリンカー、-OPO-結合を含むリンカー)が挙げられる。上記複数の連結物における複数とは、2以上であれば特に限定されないが、例えば2個、3個又は4個であり得る。上記(a)~(d)における各ヌクレオチドはそれぞれ、同一又は異なって、リボース(例、ピリミジンヌクレオチドのリボース)の2’位においてヒドロキシル基を含むヌクレオチドであるか、あるいはリボースの2’位において、ヒドロキシル基が、任意の基(例、水素原子、フッ素原子又は-O-Me基)で置き換えられているヌクレオチドであり得る。
 本発明のアプタマーは、NGFに対する結合性、NGFとNGF受容体との結合阻害活性、NGFの神経細胞突起伸長阻害活性、NGFの細胞増殖阻害活性、アプタマーの安定性、薬物送達性、血液中での安定性等を高めるため、各ヌクレオチドの糖残基(例、リボース)が修飾されたものであってもよい。糖残基において修飾される部位としては、例えば、糖残基の2’位、3’位及び/又は4’位の酸素原子を他の原子に置き換えたものなどが挙げられる。修飾の種類としては、例えば、フルオロ化、O-アルキル化(例、O-メチル化、O-エチル化)、O-アリル化、S-アルキル化(例、S-メチル化、S-エチル化)、S-アリル化、アミノ化(例、-NH)が挙げられる。他にも、4’位の酸素を硫黄に置き換えた4’-SRNA、2’位と4’位とをメチレンを介して架橋したLNA(Locked Nucleic Acid)、3’位の水酸基をアミノ基に置き換えた3’-N-ホスホロアミデート核酸などを例として挙げることができる。このような糖残基の改変は、自体公知の方法により行うことができる(例えば、Sproat et al.,(1991)Nucle.Acid.Res.19,733-738;Cotton et al.,(1991)Nucl.Acid.Res.19,2629-2635;Hobbs et al.,(1973)Biochemistry 12,5138-5145参照)。
 本発明のアプタマーはまた、NGFに対する結合性、NGFとNGF受容体との結合阻害活性、NGFの神経細胞突起伸長阻害活性、NGFの細胞増殖阻害活性、アプタマーの安定性、薬物送達性、血液中での安定性等を高めるため、核酸塩基(例、プリン、ピリミジン)が改変(例、化学的置換)されたものであってもよい。このような改変としては、例えば、5位ピリミジン改変、6および/または8位プリン改変(O-メチル修飾など)、環外アミンでの改変、4-チオウリジンでの置換、5-ブロモ又は5-ヨード-ウラシルでの置換が挙げられる。また、ヌクレアーゼ及び加水分解に対して耐性であるように、本発明のアプタマーに含まれるリン酸基が改変されていてもよい。例えば、アプタマーのホスフェート部分が、P(O)S(チオエート)、P(S)S(ジチオエート)、P(O)NR(アミデート)、P(O)R、P(O)OR’、CO又はCH(ホルムアセタール)、P(O)BH(ボラノホスフェート)又は3’-アミン(-NH-CH-CH-)で置き換えられていてもよい〔ここで各々のR又はR’は独立して、Hであるか、あるいは置換されているか、又は置換されていないアルキル(例、メチル、エチル)である〕。
 連結基としては、-O-、-N-又は-S-が例示され、これらの連結基を通じて隣接するヌクレオチドに結合し得る。
 改変はまた、キャッピングのような3’及び5’の改変を含んでもよい。
 改変はさらに、ポリエチレングリコール(以下、「PEG」と記載する場合がある)、アミノ酸、ペプチド、inverted dT、Myristoyl、Lithocolic-oleyl、Docosanyl、Lauroyl、Stearoyl、Palmitoyl、Oleoyl、Linoleoyl、その他脂質、ステロイド、コレステロール、カフェイン、ビタミン、色素、蛍光物質、抗癌剤、毒素、酵素、放射性物質、ビオチンなどを末端に付加することにより行われ得る。このような改変については、例えば、米国特許第5,660,985号、同第5,756,703号を参照のこと。
 特に、改変がPEGの末端付加によって行われる場合、PEGの分子量は特に限定されないが、好ましくは1000~100000、より好ましくは30000~90000である。PEGは、直鎖状であってもよいし、二つ以上の鎖に分岐したもの(マルチアームPEG)であってもよい。
 このようなPEGとしては特に限定されず、当業者であれば市販あるいは公知のPEGを適宜選択して用いることができる(例えば、http://www.peg-drug.com/peg_product/branched.htmlを参照のこと)が、本発明のアプタマーに適用するPEGの好適例として具体的には、分子量40000の2分岐GS型PEG(SUNBRIGHT GL2-400GS2 日油製)、分子量40000の2分岐TS型PEG(SUNBRIGHT GL2-400TS 日油製)、分子量40000の4分岐TS型PEG(SUNBRIGHT GL4-400TS 日油製)、分子量80000の2分岐TS型PEG(SUNBRIGHT GL2-800TS 日油製)、または分子量80000の4分岐TS型PEG(SUNBRIGHT GL4-800TS 日油製)などが挙げられる。
 この場合、本発明のアプタマーは、PEGが末端に直接付加されていてもよいが、その末端にPEGと結合可能な基を有するリンカーなどが付加され、それを介してPEGを本発明のアプタマーに付加することがより好ましい。
 PEGと本発明のアプタマーのリンカーとしては特に限定されず、炭素鎖数や官能基などを結合部位やPEGの種類などに応じて適宜選択することができる。このようなリンカーとしては、例えばアミノ基を有するリンカーが挙げられ、具体的には、5’末端に付加する場合は、ssH Linker(SAFC)またはDMS(O)MT-AMINO-MODIFIER(GLENRESERCH)が、3’末端に付加する場合は、TFA Amino C-6 lcaa CPG(ChemGenes)などが例示される。このリンカーを選択した場合、PEGには、例えばN-hydroxysuccinimideの活性基を付加した上で、これをリンカー側のアミノ基と反応させることで、本発明のアプタマーとPEGとをリンカーを介して結合することができる。
 なおPEGやリンカーとしては、市販のものを好ましく用いることができる。またPEG、リンカーおよび本発明のアプタマーの結合に関する反応条件などは、当業者であれば適宜設定することが可能である。
 本発明のアプタマーは、本明細書中の開示及び当該技術分野における自体公知の方法により化学合成することができる。アプタマーは、リン酸基の負電荷を利用したイオン結合、リボースを利用した疎水結合および水素結合、核酸塩基を利用した水素結合やスタッキング結合など多様な結合様式により標的物質と結合する。特に、構成ヌクレオチドの数だけ存在するリン酸基の負電荷を利用したイオン結合は強く、タンパク質の表面に存在するリジンやアルギニンの正電荷と結合する。このため、標的物質との直接的な結合に関わっていない核酸塩基は置換することができる。特に、ステム構造の部分は既に塩基対が作られており、また、二重らせん構造の内側を向いているので、核酸塩基は、標的物質と直接結合し難い。従って、塩基対を他の塩基対に置換してもアプタマーの活性は減少しない場合が多い。ループ構造など塩基対を作っていない構造においても、核酸塩基が標的分子との直接的な結合に関与していない場合に、塩基の置換が可能である。リボースの2’位の修飾に関しては、まれにリボースの2’位の官能基が標的分子と直接的に相互作用していることがあるが、多くの場合無関係であり、他の修飾分子に置換可能である。このようにアプタマーは、標的分子との直接的な結合に関与している官能基を置換または削除しない限り、その活性を保持していることが多い。また、全体の立体構造が大きく変わらないことも重要である。
 アプタマーは、SELEX及びその改良法(例えば、Ellington et al.,(1990)Nature,346,818-822;Tuerk et al.,(1990)Science,249,505-510)を利用することで作製することができる。SELEXではラウンド数を増やしたり、競合物質を使用したりすることで、標的物質に対してより結合力の強いアプタマーが濃縮され、選別されてくる。よって、SELEXのラウンド数を調節したり、及び/又は競合状態を変化させたりすることで、結合力が異なるアプタマー、結合形態が異なるアプタマー、結合力や結合形態は同じであるが塩基配列が異なるアプタマーを得ることができる場合がある。また、SELEXにはPCRによる増幅過程が含まれるが、その過程でマンガンイオンを使用するなどして変異を入れることで、より多様性に富んだSELEXを行うことが可能となる。
 SELEXで得られるアプタマーは標的物質に対して親和性が高い核酸であり、そのことは標的物質の活性部位に結合することを意味しない。従って、SELEXで得られるアプタマーは必ずしも標的物質の機能に作用するとは限らない。NGFは塩基性タンパク質であり、核酸が非特異的に結合しやすいと考えられる。活性部位に結合しないアプタマーはその標的物質の活性に影響を及ぼさない。実際、コントロールで用いたRNAはNGFとNGF受容体の結合を阻害しなかった。
 このようにして選ばれた活性のあるアプタマーに基づき、より高い活性を有するアプタマーを獲得するために取得されたアプタマーの配列を基にしたSELEXを行うことが出来る。具体的な方法とは、ある配列が決まっているアプタマーの一部をランダム配列にしたテンプレートや10~30%程度のランダム配列をドープしたテンプレートを作製して、再度SELEXを行うものである。
 SELEXで得られるアプタマーは80ヌクレオチド程度の長さがあり、これをそのまま医薬にすることは難しい。そこで、試行錯誤を繰り返し、容易に化学合成ができる73ヌクレオチド以下、好ましくは70ヌクレオチド以下、より好ましくは60ヌクレオチド以下、さらに好ましくは50ヌクレオチド以下、最も好ましくは45ヌクレオチド以下の長さまで短くする必要がある。SELEXで得られるアプタマーはそのプライマー設計に依存して、その後の最小化作業のしやすさが変わる。うまくプライマーを設計しないと、SELEXによって活性のあるアプタマーが選別できたとしても、その後の開発が不可能となる。本発明では43ヌクレオチドでも活性を保持しているアプタマーを得ることができた。
 アプタマーは化学合成が可能であるので改変が容易である。アプタマーはMFOLDプログラムを用いて二次構造を予測したり、X線解析やNMR解析によって立体構造を予測したりすることで、どのヌクレオチドを置換または欠損することが可能か、また、どこに新たなヌクレオチドを挿入可能かある程度予測することができる。予測された新しい配列のアプタマーは容易に化学合成することができ、そのアプタマーが活性を保持しているかどうか既存のアッセイ系により確認することができる。
 得られたアプタマーの標的物質との結合に重要な部分が、上記のような試行錯誤を繰り返すことにより特定できた場合、その配列の両端に新しい配列を付加しても、多くの場合活性は変化しない。そしてこのような新しい配列の長さは特に限定されるものではない。
 特に、前述したUGAAARAAACC(配列番号64)またはCGAAMRAAACU(配列番号65)で表される配列は、本発明のアプタマーがNGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害する上で重要な部分であるが、これらの配列の両端に新しい配列を付加しても、多くの場合活性は変化しない。またこれらの配列は、前記修飾を受けていてもよい。
 修飾に関しても配列と同様に高度に設計又は改変可能である。
 以上のように、アプタマーは高度に設計又は改変可能である。本発明はまた、所定の配列(例、ステム部分、インターナルループ部分、ヘアピンループ部分及び一本鎖部分から選ばれる部分に対応する配列:以下、必要に応じて固定配列と省略する)を含むアプタマーを高度に設計又は改変可能であるアプタマーの製造方法を提供する。
 例えば、このようなアプタマーの製造方法は、下記:
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
〔上記において、(N)aはa個のNからなるヌクレオチド鎖を示し、(N)bは、b個のNからなるヌクレオチド鎖を示し、Nはそれぞれ、同一又は異なって、A、G、C、U及びT(好ましくは、A、G、C及びU)からなる群より選ばれるヌクレオチドである。a、bはそれぞれ、同一又は異なって、任意の数であり得るが、例えば1~約100個、好ましくは1~約50個、より好ましくは1~約30個、さらにより好ましくは1~約20個又は1~約10個であり得る。〕で表されるヌクレオチドからなる単一種の核酸分子又は複数種の核酸分子(例、a、bの数等が異なる核酸分子のライブラリ)、及びプライマー用配列(i)、(ii)にそれぞれ対応するプライマー対を用いて、固定配列を含むアプタマーを製造することを含む。
 本発明のアプタマーとして好ましくは、配列番号26で表される配列を含み、かつ塩基長が73以下であることを特徴とする、NGFに結合するアプタマーである。
 配列番号26で表される配列は本発明のアプタマーがNGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害するなど、本発明のアプタマーとして機能する上で重要な部分であるが、これらの配列の両端に新しい配列を付加しても本発明のアプタマーとしての機能が損なわれることはない。またこれらの配列は、前記した糖残基の修飾・核酸塩基やリン酸基の改変などを受けていてもよい。
 すなわち本発明のアプタマーとして、
配列番号26で表される配列を含み、かつ塩基長が73以下であることを特徴とする、NGFに結合するアプタマーであって、
(i)少なくとも1種のヌクレオチドが、リボースの2’位において、ヒドロキシル基が、水素原子、フッ素原子、-O-アルキル基、-O-アシル基またはアミノ基で置き換えられている、アプタマー;
(ii)PEG、アミノ酸、ペプチド、inverted dT、Myristoyl、Lithocolic-oleyl、Docosanyl、Lauroyl、Stearoyl、Palmitoyl、Oleoyl、Linoleoyl、その他脂質、ステロイド、コレステロール、カフェイン、ビタミン、色素、蛍光物質、抗癌剤、毒素、酵素、放射性物質またはビオチンが末端に付加されている、アプタマー;
(iii)(i)および(ii)の要件を満足するアプタマー;
などを、好ましい具体例として挙げることができる。
 また本発明は、NGFに結合する、疎水性物質付加アプタマー(以下、「本発明の疎水性物質付加アプタマー」と記載する)を提供する。
 本明細書中、疎水性物質付加アプタマーとは、アプタマーが疎水性物質と結合したものをいう。すなわち、本発明の疎水性物質付加アプタマーとは、「アプタマー」部分と、「疎水性物質」部分とが結合した物質のことをいう。「アプタマー」部分と「疎水性物質」部分とは、「リンカー」部分で結合していてもよい。
 本発明の疎水性物質付加アプタマーの「アプタマー」部分は、先の「本発明のアプタマー」において説明したとおりである。したがって、アプタマー部分を構成するヌクレオチドの種類は、疎水性物質付加アプタマーがNGFに結合する限り特に限定されない。すなわち先の条件を満足する限り、DNA、RNAなどの自体公知のヌクレオチド、修飾核酸またはそれらの混合物のいずれであってもよく、また二本鎖であっても一本鎖であってもよい。また、ヌクレオチドの配列自体も特に限定されない。なお上記「修飾核酸」とは、特に示されない限り、下記で示される「置換可能な位置で置換(修飾)されているヌクレオチド」のことをいう。
 あるいは本発明の疎水性物質付加アプタマーは、NGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害する疎水性物質付加アプタマーであり得る。本発明の疎水性物質付加アプタマーがNGFとNGF受容体との結合を阻害するか否かは、先の「本発明のアプタマー」における試験あるいは実施例2に記載の試験により評価することができる。
 また本発明の疎水性物質付加アプタマーは、NGFに結合し、NGFの神経細胞突起伸長活性またはNGFの細胞増殖活性を阻害する疎水性物質付加アプタマーであり得る。NGFの神経細胞突起伸長活性を本発明の疎水性物質付加アプタマーが阻害するか否かは、先の「本発明のアプタマー」における試験あるいは実施例3に記載の試験により評価することができる。またNGFの細胞増殖活性を本発明の疎水性物質付加アプタマーが阻害するか否かは、先の「本発明のアプタマー」における試験あるいは実施例4に記載の試験により評価することができる。
 また、NGFの神経細胞突起伸長活性またはNGFの細胞増殖活性が50%となる際の本発明の疎水性物質付加アプタマー濃度(IC50;50%阻害濃度)は、好ましくは10nM以下であり、より好ましくは3nM以下である。
 本発明の疎水性物質付加アプタマーに含まれる各ヌクレオチドは、本発明のアプタマーと同様に、リボースの2’位においてヒドロキシル基を含むヌクレオチド(即ち、未置換であるヌクレオチド)であるか、あるいはリボースの2’位において、ヒドロキシル基が、任意の原子又は基で置き換えられているヌクレオチドであり得る。このような任意の原子又は基としては、本発明のアプタマーについて挙げられた原子又は基と同様の原子又は基が挙げられる。
 本発明の疎水性物質付加アプタマーの「アプタマー」部分の塩基長としては、疎水性物質付加アプタマーがNGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害する限り特に限定されないが、73ヌクレオチド以下(なお5’末端または3’末端をinverted dTで修飾する場合、これは塩基長にカウントしない)であることが望ましい。
 74ヌクレオチド以上の疎水性物質付加アプタマーは、鎖長が長いことから医薬品用途として適用することが困難である場合が多い。換言すると、総ヌクレオチド数が73以下であれば、アプタマーの化学合成及び大量生産がより容易であり、かつコスト面でのメリットも大きい。また、化学修飾が容易であり、生体内安定性を向上させやすく、毒性が低いと考えられる。
 医薬品用途への適用の観点では、本発明の疎水性物質付加アプタマーは73ヌクレオチドよりもさらに短い塩基長であることがより望ましく、好ましくは70ヌクレオチド以下であり、より好ましくは50ヌクレオチド以下であり、最も好ましくは45ヌクレオチド以下であり得る。なお一方で、「核酸」部分の総ヌクレオチド数が少なすぎると、NGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害することができなくなる可能性がある。適切な最小ヌクレオチド数は、当業者であれば目的に応じて適宜決定することが可能である。
 「アプタマー」部分を構成する各ヌクレオチドは、疎水性物質付加アプタマーがNGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害する限り、置換可能な位置でどのように置換(修飾)されているヌクレオチドであってもよい。また全く置換(修飾)されていないヌクレオチドであってもよい。置換(修飾)される場合、当業者であれば、「置換可能な位置」は明らかであるし、また置換基についても、自体公知の置換基を選択することが可能である。
 「アプタマー」部分を構成するヌクレオチドのうち、置換可能な位置で置換(修飾)されているヌクレオチド(本明細書中、修飾核酸と記載する場合がある)としては、好ましくは、各ヌクレオチドが、リボース(例、ピリミジンヌクレオチドのリボース)の2’位がヒドロキシル基であるヌクレオチド(即ち、未置換であるヌクレオチド)、あるいはリボースの2’位において、ヒドロキシル基が、同一又は異なって、任意の原子又は置換基で置き換えられているヌクレオチドである。
 上記原子又は置換基としては、例えば、水素原子、ハロゲン原子(例、フッ素原子)、-O-アルキル基(例、-O-Me基)、-O-アシル基(例、-O-CHO基)、アミノ基(例、-NH基)などが挙げられる。
 尚、本明細書においては、疎水性物質付加アプタマーを構成するヌクレオチドをRNAと仮定して(すなわち糖基をリボースと仮定して)、ヌクレオチド中の糖基への修飾の態様を説明するが、これは、疎水性物質付加アプタマーを構成するヌクレオチドからDNAが除外されることを意味するものではなく、適宜DNAへの修飾として読み替えられる。例えば、アプタマーを構成するヌクレオチドがDNAである場合、リボースの2’位のヒドロキシル基のXへの置き換えは、デオキシリボースの2’位の一方の水素原子のXへの置き換えとして読み替えられる。
 なお本発明の疎水性物質付加アプタマーにおいて、ウラシルをチミンに置換することによって、NGFに対する結合性、NGFとNGF受容体との結合阻害活性、NGFの神経細胞突起伸長阻害活性、NGFの細胞増殖阻害活性、アプタマーの安定性、薬物送達性、血液中での安定性等を高めることが可能である。
 本発明の疎水性物質付加アプタマーはまた、
(a’)配列番号55~63のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)を含む疎水性物質付加アプタマー;
(b’)配列番号55~63のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)において1又は数個のヌクレオチドが置換、欠失、挿入あるいは付加されたヌクレオチド配列を含む疎水性物質付加アプタマー;
(c’)配列番号55~63のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)と70%以上(好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、最も好ましくは95%以上)の同一性を有するヌクレオチド配列を含む疎水性物質付加アプタマー;或いは
(d’)上記(a’)の複数の連結物、上記(b’)の複数の連結物、上記(c’)の複数の連結物、上記(a’)、(b’)及び(c’)の複数の連結物からなる群より選ばれる連結物であり得る。
 上記(b’)~(d’)のアプタマーまたは連結物は、NGFに結合し且つ/又はNGFの活性(NGF受容体との結合活性等)を阻害し得る。
 また好ましくは、上記(b’)~(d’)のアプタマーまたは連結物は、NGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害するアプタマー、および/またはNGFに結合し、NGFの神経細胞突起伸長活性を阻害するアプタマーである。
 さらに好ましくは、上記(b’)~(d’)のアプタマーまたは連結物は、NGFの神経細胞突起伸長または細胞増殖活性の阻害濃度が10nM以下であるアプタマーであり、より好ましくは、NGFの神経細胞突起伸長または細胞増殖活性の阻害濃度が3nM以下であるアプタマーまたは連結物である。
 上記(b’)において、置換、欠失、挿入又は付加されるヌクレオチド数は、アプタマーがNGFに結合し、NGFの活性(NGF受容体との結合活性等)を阻害し得、またアプタマー自体のヌクレオチド数が73を超えない限り特に限定されないが、例えば約30個以下、好ましくは約20個以下、より好ましくは約10個以下、さらにより好ましくは5個以下、最も好ましくは4個、3個、2個又は1個であり得る。
 上記(d’)において連結はタンデム結合にて行われ得る。また、連結に際し、リンカーを利用してもよい。リンカーとしては、ヌクレオチド鎖(例、1~約20ヌクレオチド)、非ヌクレオチド鎖(例、-(CH-リンカー、-(CHCHO)-リンカー、ヘキサエチレングリコールリンカー、TEGリンカー、ペプチドを含むリンカー、-S-S-結合を含むリンカー、-CONH-結合を含むリンカー、-OPO-結合を含むリンカー)が挙げられる。上記複数の連結物における複数とは、2以上であれば特に限定されないが、例えば2個、3個又は4個であり得る。上記(a’)~(d’)における各ヌクレオチドはそれぞれ、同一又は異なって、リボース(例、ピリミジンヌクレオチドのリボース)の2’位においてヒドロキシル基を含むヌクレオチドであるか、あるいはリボースの2’位において、ヒドロキシル基が、任意の基(例、水素原子、フッ素原子又は-O-Me基)で置き換えられているヌクレオチドであり得る。
 本発明の疎水性物質付加アプタマーにおける、「糖残基」部分、「核酸塩基」部分および「リン酸基」部分、ならびにこれらの置換(修飾)・改変等については、本発明のアプタマーにおける「糖残基」部分、「核酸塩基」部分および「リン酸基」部分、ならびにこれらの置換(修飾)・改変等について説明したものと同様である。
 本発明の疎水性物質付加アプタマーにおいて、改変はさらに、PEG、アミノ酸、ペプチド、inverted dT、Myristoyl、Lithocolic-oleyl、Docosanyl、Lauroyl、Stearoyl、Palmitoyl、Oleoyl、Linoleoyl、その他脂質、ステロイド、コレステロール、カフェイン、ビタミン、色素、蛍光物質、抗癌剤、毒素、酵素、放射性物質、ビオチンなどを末端に付加することにより行われ得る。上記の改変については、本発明のアプタマーと同様に取り扱うことができる。
 本発明の疎水性物質付加アプタマーの「疎水性物質」部分を構成する物質は、疎水性物質付加アプタマーがNGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害する限り、置換可能な位置でどのように置換(修飾)されている物質であってもよい。当業者であれば、「置換可能な位置」は明らかであるし、また置換基についても、自体公知の置換基を選択することが可能である。
 これらの「疎水性物質」をアプタマーに結合させることによって、NGFに対する結合性、NGFとNGF受容体との結合阻害活性、NGFの神経細胞突起伸長阻害活性、NGFの細胞増殖阻害活性、アプタマーの安定性、薬物送達性、血液中での安定性等を高めることができる。
 なお、本明細書で「疎水性物質」として具体的には、後述するステロイド類やビタミン類が挙げられ、好ましくはステロール類が挙げられ、より好ましくはコレステロール類が挙げられる。
 本明細書で「ステロイド類」とは、シクロペンタフェナントレン骨格またはそれから1つ以上の環結合の切断、環拡大、環縮小の結果の骨格を基本骨格として有する化合物であって、その全部または一部が水素化されている化合物を意味する。ステロイド類として具体的にはストロファンチジン、コレスタノール、ステロイドホルモン(テストステロン、エストラジオール、プロゲステロン、コルチゾール、コルチゾン、アルドステロン、コルチコステロン、デオキシコルチコステロンなど)などが挙げられる。また公知のビタミン類、具体的にはビタミンA、ビタミンD、ビタミンE、ビタミンKなどであってもよい。
 本明細書で「ステロール類」とは、ステロイド類のシクロペンタフェナントレン骨格におけるA環のC-3位がヒドロキシル化またはカルボニル化された化合物を意味する。ステロール類として具体的にはステロイドホルモン、カンプエステロール、シトステロール、スチグマステロール、エルゴステロールなどが挙げられる。
 本明細書で「コレステロール類」とは動物由来のステロールを意味し、コレステロールだけでなくコレステロールに水素添加したものやエステル反応により誘導体化したものも含まれる。このようなコレステロール誘導体としては、水素添加したジヒドロコレステロール、低級または高級脂肪酸とのエステル体が挙げられる。ヒドロキシステアリン酸コレステリル、オレイン酸コレステリル、イソステアリン酸コレステリル、ラノリン脂肪酸コレステリル、マカデミアナッツ油脂肪酸コレステリル、ノナン酸コレステリル、ステアリン酸コレステリル、酪酸コレステリルなどが市販されている。
 本発明の疎水性物質付加アプタマーは、「アプタマー」部分と「疎水性物質」部分とが直接結合してなるものであってもよいし、「アプタマー」部分と「疎水性物質」部分とを「リンカー」部分で結合してなるものであってもよい。「アプタマー」部分と「疎水性物質」部分とは、当業者に公知の方法で結合することが可能である。
 本発明の疎水性物質付加アプタマーの、「アプタマー」部分と「疎水性物質」部分とを結合しうる「リンカー」部分としては、疎水性物質付加アプタマーがNGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害する限り特に限定されず、当業者であれば適宜決定することが可能である。
 このようなリンカーとしては、例えば、飽和炭化水素鎖(例、炭素数12の飽和炭化水素鎖)、ヌクレオチド鎖(例、1~約20ヌクレオチド)、非ヌクレオチド鎖(例、-(CH-リンカー、ペプチドを含むリンカー(例、-Gly-Cys-)、-S-S-結合を含むリンカー(例、-(CH-S-S-(CH-)、-CONH-結合を含むリンカー(例、-(CH-CONH-(CH-、-O-CO-NH-(CH-)、-OPO-結合を含むリンカー(例、-(CH-O-PO-O-(CH-)、ポリエチレングリコールリンカー(例、ヘキサエチレングリコールリンカー))などが挙げられる(各リンカーにおけるmおよびnは、任意の整数を示す)。
 リンカー部分は、上記で例示したリンカーを枝分かれさせて、ジメトキシトリチル基(DMT)や蛍光物質などの機能性分子を付加したものであってもよい(これらの機能性分子は最終的に取り除かれる場合がある)。更に、トロンビン、マトリックスメタロプロテアーゼ(MMP)、FactorXなどの酵素が認識して切断することができるペプチドであってもよいし、ヌクレアーゼや制限酵素が切断できるポリヌクレオチドであってもよい。
 上記「飽和炭化水素鎖」としては、例えば、炭素数が3、6、12、18、24個のものが考えられる。また、枝分かれしたものであってもよい。
 上記「ヌクレオチド鎖」としては、リボース(例、ピリミジンヌクレオチドのリボース)の2’位においてヒドロキシル基を含むヌクレオチドであるか、あるいはリボースの2’位において、ヒドロキシル基が、任意の基(例、水素原子、フッ素原子又は-O-Me基)で置き換えられている(修飾されている)ヌクレオチドが挙げられる。
 「リンカー」部分と「疎水性物質」部分との結合は、特に限定されず、両部分は当業者に公知の方法で結合することが可能である。
 また、「リンカー」部分と「アプタマー」部分との結合も、特に限定されず、両部分は当業者に公知の方法で結合することが可能である。
 本発明の疎水性物質付加アプタマーの「リンカー」部分および「疎水性物質」部分は、「アプタマー」部分の5’末端側に結合していてもよいし、3’末端側に結合していてもよい。また、「アプタマー」部分の5’末端および3’末端の両方に結合していてもよい。また、「アプタマー」部分の途中の配列の核酸塩基またはリボース、リン酸部分に結合してもよい。
 本発明の疎水性物質付加アプタマーの「アプタマー」部分は、先に記載した本発明のアプタマーの製造方法と同様の方法により製造することができる。そして本発明の疎水性物質付加アプタマーは、当該技術分野における自体公知の方法により化学合成することができる。例えば、市販のコレステロールTEGホスホロアミダイト(Glen Research社製)を用いて、合成したアプタマーの5’末端にコレステロールを付加することができる。この場合、市販のアミダイト体であるSpacer18(Glen Research社製)などを同時に用いることで、アプタマーとコレステロールとの間に任意のリンカーを加えることもできる。
 また、市販の3’-コレステロールTEG-CPG(Glen Research社製)を用いることで、アプタマーの3’末端にコレステロールを付加することができる。上記と同様に、市販のアミダイト体であるSpacer18(Glen Research社製)などを同時に用いることで、アプタマーとコレステロールとの間に任意のリンカーを加えることができる。
 同様の手法を用いることで、途中の配列の核酸塩基やリボース、リン酸部分にコレステロールを付加することもできる。
 さらに、アプタマーの末端または途中にアミノ基を付加することで、合成機を用いた核酸合成の後に、コレステロールをカップリング反応により付加することが可能である。
 アプタマーの5’末端にアミノ基を付加するには、市販の5’-amino-modifierC6-TFA(Glen Research社製)などを用いることができる。
 また、アプタマーの3’末端にアミノ基を付加するには、市販の3’-amino-modifierC7-CPG(Glen Research社製)などを用いることができる。
 アプタマーの途中にコレステロールを付加するには、核酸塩基中のアミノ基を利用したり、ピリミジンの5位やプリンの6位などにアミノ基を導入することで行うことができる。また、リボースの2’位やリン酸部分にアミノ基を導入してもよい。
 コレステロールとアミノ基とのカップリング反応は、コレステロールに活性基を付加することで容易に行うことができる。これにより、本発明の疎水性物質付加アプタマーを製造することができる。
 本発明はまた、本発明のアプタマー(以下、疎水性物質付加アプタマーを含む)及びそれに結合した機能性物質を含む複合体を提供する。本発明の複合体におけるアプタマーと機能性物質との間の結合は共有結合、又は非共有結合であり得る。本発明の複合体は、本発明のアプタマーと1以上(例、2又は3個)の同種又は異種の機能性物質とが結合したものであり得る。機能性物質は、本発明のアプタマーに何らかの機能を新たに付加するもの、あるいは本発明のアプタマーが保持し得る何らかの特性を変化(例、向上)させ得るものである限り特に限定されない。機能性物質としては、例えば、タンパク質、ペプチド、アミノ酸、脂質、糖質、単糖、ポリヌクレオチド、ヌクレオチドが挙げられる。機能性物質としてはまた、例えば、親和性物質(例、ビオチン、ストレプトアビジン、標的相補配列に対して親和性を有するポリヌクレオチド、抗体、グルタチオンセファロース、ヒスチジン)、標識用物質(例、蛍光物質、発光物質、放射性同位体)、酵素(例、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ)、薬物送達媒体(例、リポソーム、ミクロスフェア、ペプチド、ポリエチレングリコール類)、薬物(例、カリケアマイシンやデュオカルマイシンなどミサイル療法に使用されているもの、シクロフォスファミド、メルファラン、イホスファミドまたはトロホスファミドなどのナイトロジェンマスタード類似体、チオテパなどのエチレンイミン類、カルムスチンなどのニトロソ尿素、テモゾロミドまたはダカルバジンなどのアルキル化剤、メトトレキセートまたはラルチトレキセドなどの葉酸類似代謝拮抗剤、チオグアニン、クラドリビンまたはフルダラビンなどのプリン類似体、フルオロウラシル、テガフールまたはゲムシタビンなどのピリミジン類似体、ビンブラスチン、ビンクリスチンまたはビンオレルビンなどのビンカアルカロイド及びその類似体、エトポシド、タキサン、ドセタキセルまたはパクリタキセルなどのポドフィロトキシン誘導体、ドキソルビシン、エピルビシン、イダルビシン及びミトキサントロンなどのアントラサイクリン類及び類似体、ブレオマイシン及びミトマイシンなどの他の細胞毒性抗生物質、シスプラチン、カルボプラチン及びオキザリプラチンなどの白金化合物、ペントスタチン、ミルテフォシン、エストラムスチン、トポテカン、イリノテカン及びビカルタミド)、毒素(例、リシン毒素、リア毒素及びベロ毒素)が挙げられる。これらの機能性分子は最終的に取り除かれる場合がある。更に、トロンビンやマトリックスメタロプロテアーゼ(MMP)、FactorXなどの酵素が認識して切断することができるペプチド、ヌクレアーゼや制限酵素が切断できるポリヌクレオチドであってもよい。
 本発明のアプタマー及び複合体は、例えば、医薬又は診断薬、検査薬、試薬、飲料水や食品の添加剤、増強剤、緩和剤として使用され得る。
 本発明のアプタマー及び複合体は、NGFに結合し、NGFとNGF受容体との結合を阻害することによって、NGFの機能を阻害する活性を有し得る。上述のように、NGFは疼痛や炎症と深く関わっている。従って、本発明のアプタマー(疎水性物質付加アプタマー)及び複合体は、疼痛や炎症を伴う疾患を治療又は予防するための医薬(抗疼痛剤、抗炎症剤等)として有用である。
 ここで疼痛としては侵害受容性疼痛(筋肉痛、背部痛、上肢痛、鞭打ち損傷、関節痛、変形性関節症、痛風、慢性関節リウマチ、頭痛、片頭痛、緊張型頭痛、群発頭痛、二次性頭痛、口腔顔面痛、歯痛、抜歯後カウザルギー、幻歯痛、内臓痛、心臓痛、腹痛、中間痛、月経困難、陣痛、腎臓痛、尿管痛、膀胱痛など)、炎症性疼痛、神経因性疼痛(糖尿病性ニューロパチー、中毒性ニューロパチー、術後痛、幻肢痛、断端部痛、反射性交感神経性ジストロフィー、カウザルギー、帯状疱疹後痛、三叉神経痛、中枢性疼痛)、癌性疼痛(内臓器官への癌浸潤による痛み、癌組織の血管浸潤による血管閉塞で生じる痛み、骨転移の痛み、脳内転移に伴う痛み、癌組織の末梢神経浸潤による痛み)、線維筋痛などが挙げられる。
 ここで炎症に伴う疾患としては、特に限定されるものではないが、全身性エリテマトーデス、多発性硬化症、乾癬、変形性関節症、慢性関節リウマチ、間質性膀胱炎、喘息などが挙げられる。
 上記癌としては、特に限定されるものではないが、食道癌、甲状腺癌、膀胱癌、大腸癌、胃癌、膵臓癌、胸部癌、肝臓癌、肺癌、非小細胞肺癌、乳癌、神経芽細胞腫、ニューロブラストーマ、グリオブラストーマ、子宮癌、子宮頚癌、卵巣癌、ウィルムス腫瘍、前立腺癌などが挙げられる。
 NGFはその受容体TrkAに結合するとTrkAのチロシンリン酸化およびTrkA下流のRas-MAPK、PLC-γ、PI3Kなどを活性化させ、神経細胞の生存や分化といった生理的作用を発揮する。一方、p75受容体を介するシグナル経路では細胞死を誘導する。従って、本発明のアプタマー及び複合体は、これらのシグナル伝達経路の活性化に関係した疾患の医薬又は診断薬、検査薬、試薬として使用され得る。これらのシグナル伝達経路の活性化に関係した疾患としては、上記疼痛や炎症性疾患、癌が挙げられる。
 本発明のアプタマー及び複合体が医薬、診断薬、検査薬、試薬などとして用いられる場合、それが投与される対象としては特に限定されないが、例えば、霊長類(例、ヒト、サル)、げっ歯類(例、マウス、ラット、モルモット)、並びにペット、家畜及び使役動物(例、イヌ、ネコ、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジ、ブタ)が挙げられる。
 本発明のアプタマー及び複合体は、NGFに特異的に結合し得る。従って、本発明のアプタマー及び複合体は、NGF検出用プローブとして有用である。該プローブは、NGFのインビボイメージング、血中濃度測定、組織染色、ELISA等に有用である。また、該プローブは、NGFが関与する疾患(疼痛や炎症を伴う疾患等)の診断薬、検査薬、試薬等として有用である。
 また、そのNGFへの特異的結合に基づき、本発明のアプタマー及び複合体はNGFの分離精製用リガンドとして使用され得る。
 また、本発明のアプタマー及び複合体は、恋愛などの精神的状態を調べるための検査薬や精神状態を調整するための医薬、調整剤、増強剤、緩和剤として使用され得る。
 また、本発明のアプタマー及び複合体は、薬物送達剤として使用され得る。
 本発明の医薬は、医薬上許容される担体が配合されたものであり得る。医薬上許容される担体としては、例えば、ショ糖、デンプン、マンニット、ソルビット、乳糖、グルコース、セルロース、タルク、リン酸カルシウム、炭酸カルシウム等の賦形剤、セルロース、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ポリプロピルピロリドン、ゼラチン、アラビアゴム、ポリエチレングリコール、ショ糖、デンプン等の結合剤、デンプン、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルスターチ、ナトリウム-グリコール-スターチ、炭酸水素ナトリウム、リン酸カルシウム、クエン酸カルシウム等の崩壊剤、ステアリン酸マグネシウム、エアロジル、タルク、ラウリル硫酸ナトリウム等の滑剤、クエン酸、メントール、グリシルリシン・アンモニウム塩、グリシン、オレンジ粉等の芳香剤、安息香酸ナトリウム、亜硫酸水素ナトリウム、メチルパラベン、プロピルパラベン等の保存剤、クエン酸、クエン酸ナトリウム、酢酸等の安定剤、メチルセルロース、ポリビニルピロリドン、ステアリン酸アルミニウム等の懸濁剤、界面活性剤等の分散剤、水、生理食塩水、オレンジジュース等の希釈剤、カカオ脂、ポリエチレングリコール、白灯油等のベースワックスなどが挙げられるが、それらに限定されるものではない。
 経口投与に好適な製剤は、水、生理食塩水、オレンジジュースのような希釈液に有効量のリガンドを溶解させた液剤、有効量のリガンドを固体や顆粒として含んでいるカプセル剤、サッシェ剤又は錠剤、適当な分散媒中に有効量の有効成分を懸濁させた懸濁液剤、有効量の有効成分を溶解させた溶液を適当な分散媒中に分散させ乳化させた乳剤等である。
 また、本発明の医薬は必要により、味のマスキング、腸溶性あるいは持続性などの目的のため、自体公知の方法でコーティングすることができる。コーティングに用いられるコーティング剤としては、例えば、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、エチルセルロース、ヒドロキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ポリオキシエチレングリコール、ツイーン80、プルロニックF68、セルロースアセテートフタレート、ヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレート、ヒドロキシメチルセルロースアセテートサクシネート、オイドラギット(ローム社製、ドイツ,メタアクリル酸・アクリル酸共重合体)および色素(例、ベンガラ、二酸化チタンなど)などが用いられる。当該医薬は、速放性製剤、徐放性製剤のいずれであってもよい。徐放の基材としては、例えば、リポソーム、アテロコラーゲン、ゼラチン、ヒドロキシアパタイト、PLGAなどが挙げられる。
 非経口的な投与(例えば、静脈内投与、皮下投与、筋肉内投与、局所投与、腹腔内投与、経鼻投与、経肺投与など)に好適な製剤としては、水性及び非水性の等張な無菌の注射液剤があり、これには抗酸化剤、緩衝液、制菌剤、等張化剤等が含まれていてもよい。また、水性及び非水性の無菌の懸濁液剤が挙げられ、これには懸濁剤、可溶化剤、増粘剤、安定化剤、防腐剤等が含まれていてもよい。当該製剤は、アンプルやバイアルのように単位投与量あるいは複数回投与量ずつ容器に封入することができる。また、有効成分及び医薬上許容される担体を凍結乾燥し、使用直前に適当な無菌の溶媒に溶解又は懸濁すればよい状態で保存することもできる。また、徐放製剤も好適な製剤として挙げることができる。徐放製剤としては、人工骨や生体分解性もしくは非分解性スポンジ、バッグ、薬剤ポンプ、浸透圧ポンプなど、体内に埋め込まれた担体もしくは容器からの徐放形態、あるいは体外から継続的もしくは断続的に体内もしくは局所に送達されるデバイス等が挙げられる。生体分解性の基材としては、リポソーム、カチオニックリポソーム、Poly(lactic-co-glycolic)acid(PLGA)、アテロコラーゲン、ゼラチン、ヒドロキシアパタイト、多糖シゾフィランなどが挙げられる。更に注射液剤や徐放製剤以外にも、吸入剤、軟膏剤も可能である。吸入剤の場合、凍結乾燥状態の有効成分を微細化し適当な吸入デバイスを用いて吸入投与する。吸入剤には、更に必要に応じて従来使用されている界面活性剤、油、調味料、シクロデキストリンまたはその誘導体等を適宜配合することができる。
 ここで界面活性剤としては、例えばオレイン酸、レシチン、ジエチレングリコールジオレエート、テトラヒドロフルフリルオレエート、エチルオレエート、イソプロピルミリステート、グリセリルトリオレエート、グリセリルモノラウレート、グリセリルモノオレエート、グリセリルモノステアレート、グリセリルモノリシノエート、セチルアルコール、ステアリルアルコール、ポリエチレングリコール400、セチルピリジニウムクロリド、ソルビタントリオレエート(商品名スパン85)、ソルビタンモノオレエート(商品名スパン80)、ソルビタンモノラウレート(商品名スパン20)、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油(商品名HCO-60)、ポリオキシエチレン(20)ソルビタンモノラウレート(商品名ツイーン20)、ポリオキシエチレン(20)ソルビタンモノオレエート(商品名ツイーン80)、天然資源由来のレシチン(商品名エピクロン)、オレイルポリオキシエチレン(2)エーテル(商品名ブリジ92)、ステアリルポリオキシエチレン(2)エーテル(商品名ブリジ72)、ラウリルポリオキシエチレン(4)エーテル(商品名ブリジ30)、オレイルポリオキシエチレン(2)エーテル(商品名ゲナポル0-020)、オキシエチレンとオキシプロピレンとのブロック共重合体(商品名シンペロニック)等が挙げられる。油としては、例えばトウモロコシ油、オリーブ油、綿実油、ヒマワリ油等が挙げられる。また、軟膏剤の場合、適当な医薬上許容される基剤(黄色ワセリン、白色ワセリン、パラフィン、プラスチベース、シリコーン、白色軟膏、ミツロウ、豚油、植物油、親水軟膏、親水ワセリン、精製ラノリン、加水ラノリン、吸水軟膏、親水プラスチベース、マクロゴール軟膏等)を用い、有効成分と混合し製剤化し使用する。
 吸入剤は常法に従って製造することができる。すなわち、上記本発明のアプタマー及び複合体を粉末または液状にして、吸入噴射剤および/または担体中に配合し、適当な吸入容器に充填することにより製造することができる。また上記本発明のアプタマー及び複合体が粉末の場合は通常の機械的粉末吸入器を、液状の場合はネブライザー等の吸入器をそれぞれ使用することもできる。ここで噴射剤としては従来公知のものを広く使用でき、フロン-11、フロン-12、フロン-21、フロン-22、フロン-113、フロン-114、フロン-123、フロン-142c、フロン-134a、フロン-227、フロン-C318、1,1,1,2-テトラフルオロエタン等のフロン系化合物、プロパン、イソブタン、n-ブタン等の炭化水素類、ジエチルエーテル等のエーテル類、窒素ガス、炭酸ガス等の圧縮ガス等を例示できる。
 本発明の医薬の投与量は、有効成分の種類・活性、病気の重篤度、投与対象となる動物種、投与対象の薬物受容性、体重、年齢等によって異なるが、通常、成人1日あたり有効成分量として約0.0001~約100mg/kg、例えば約0.0001~約10mg/kg、好ましくは約0.005~約1mg/kgであり得る。
 本発明はまた、本発明のアプタマー及び複合体が固定化された固相担体を提供する。固相担体としては、例えば、基板、樹脂、プレート(例、マルチウェルプレート)、フィルター、カートリッジ、カラム、多孔質材が挙げられる。基板は、DNAチップやプロテインチップなどに使われているものなどであり得、例えば、ニッケル-PTFE(ポリテトラフルオロエチレン)基板やガラス基板、アパタイト基板、シリコーン基板、アルミナ基板などで、これらの基板にポリマーなどのコーティングを施したものが挙げられる。樹脂としては、例えば、アガロース粒子、シリカ粒子、アクリルアミドとN,N’-メチレンビスアクリルアミドの共重合体、ポリスチレン架橋ジビニルベンゼン粒子、デキストランをエピクロロヒドリンで架橋した粒子、セルロースファイバー、アリルデキストランとN,N’-メチレンビスアクリルアミドの架橋ポリマー、単分散系合成ポリマー、単分散系親水性ポリマー、セファロース、トヨパールなどが挙げられ、また、これらの樹脂に各種官能基を結合させた樹脂も含まれる。本発明の固相担体は、例えば、NGFの精製、及びNGFの検出、定量に有用であり得る。
 本発明のアプタマー及び複合体は、自体公知の方法により固相担体に固定できる。例えば、親和性物質(例、上述したもの)や所定の官能基を本発明のアプタマー(疎水性物質付加アプタマー)及び複合体に導入し、次いで当該親和性物質や所定の官能基を利用して固相担体に固定化する方法が挙げられる。本発明はまた、このような方法を提供する。所定の官能基は、カップリング反応に供することが可能な官能基であり得、例えば、アミノ基、チオール基、ヒドロキシル基、カルボキシル基が挙げられる。本発明はまた、このような官能基が導入されたアプタマーを提供する。
 本発明はまた、NGFの精製及び濃縮方法を提供する。特に本発明はNGFを他のファミリータンパク質から分離することが可能である。本発明の精製及び濃縮方法は、本発明の固相担体にNGFを吸着させ、吸着したNGFを溶出液により溶出させることを含み得る。本発明の固相担体へのNGFの吸着は自体公知の方法により行うことができる。例えば、NGFを含有する試料(例、細菌又は細胞の培養物又は培養上清、血液)を、本発明の固相担体又はその含有物に導入する。NGFの溶出は、中性溶液等の溶出液を用いて行うことができる。中性溶出液は特に限定されるものではないが、例えばpH約6~約9、好ましくは約6.5~約8.5、より好ましくは約7~約8であり得る。中性溶液はまた、例えば、尿素、キレート剤(例、EDTA)、カリウム塩(例、KCl)、マグネシウム塩(例、MgCl)、界面活性剤(例、ツイーン20、Triton、NP40)、グリセリンを含むものであり得る。本発明の精製及び濃縮方法はさらに、NGFの吸着後、洗浄液を用いて固相担体を洗浄することを含み得る。洗浄液としては、例えば、尿素、キレート剤(例、EDTA)、Tris、酸、アルカリ、Tranfer RNA、DNA、ツイーン20などの表面活性剤、NaClなどの塩を含むものなどが挙げられる。本発明の精製及び濃縮方法はさらに、固相担体を加熱処理することを含み得る。かかる工程により、固相担体の再生、滅菌が可能である。
 本発明はまた、NGFの検出及び定量方法を提供する。特に本発明はNGFを他のファミリータンパク質と区別して検出及び定量することができる。本発明の検出及び定量方法は、本発明のアプタマーを利用して(例、本発明の複合体及び固相担体の使用により)NGFを測定することを含み得る。NGFの検出及び定量方法は、抗体の代わりに本発明のアプタマーを用いること以外は、免疫学的方法と同様の方法により行われ得る。従って、抗体の代わりに本発明のアプタマーをプローブとして用いることにより、酵素免疫測定法(EIA)(例、直接競合ELISA、間接競合ELISA、サンドイッチELISA)、放射免疫測定法(RIA)、蛍光免疫測定法(FIA)、ウエスタンブロット法、免疫組織化学的染色法、セルソーティング法等の方法と同様の方法により、検出及び定量を行うことができる。また、PET等の分子プローブとしても、使用することができる。このような方法は、例えば、生体又は生物学的サンプルにおけるNGF量の測定、NGFが関連する疾患の診断に有用であり得る。
 本明細書中で挙げられた特許及び特許出願明細書を含む全ての刊行物に記載された内容は、本明細書での引用により、その全てが明示されたと同程度に本明細書に組み込まれるものである。
 以下に実施例を挙げ、本発明を更に詳しく説明するが、本発明は下記実施例等に何ら制約されるものではない。
実施例1:RNAアプタマー
(1)RNAアプタマーの作製
 RNAアプタマーの配列はPCT/JP09/066457に記載の配列番号40、60、62、67および68で表わされるアプタマーを基にして決定した。これらのRNAアプタマーは転写酵素を用いた方法またはホスホアミダイト法による化学合成により作製した。長鎖のRNAは化学合成するのが困難であるため転写酵素を利用して作製した。具体的には、アプタマーID:1~25、アプタマーID:27~54で表わされるアプタマーは転写により、アプタマーID:26、26(1)~(72)、29(1)とアプタマーID:55~63で表わされるアプタマーは化学合成により得た。
 転写は、目的のアプタマーのDNAを化学合成により作製し、DuraScribe(登録商標)T7 Transcription Kit(Epicentre社製)を用いることによって行った。この方法によって得られたRNAはピリミジンヌクレオチドのリボースの2’位がフルオロ化されたものである。転写産物はDNase処理の後、フェノール・クロロホルム処理によりタンパク質を除去し、エタノール沈殿により回収した。回収されたアプタマーの純度はポリアクリルアミド電気泳動法で、量は吸光度測定法で確認した。
 化学合成は、ホスホアミダイト法により行った。ホスホアミダイト法による化学合成は一般的に行われている方法であり、その方法はNucleic Acid(Vol.2)[1]Synthesis and Analysis of Nucleic Acid(Editor:Yukio Sugiura,Hirokawa Publishing Company)などに記載のとおりである。実際にはアプライドバイオシステムズ社製の核酸合成機(ABI394)等を用いて合成し、高速液体クロマトグラフィー法(HPLC)により精製した。最終合成物はHPLCを用いて純度決定し、85%以上の場合合格とした。また、MALDI-TOFMSにより分子量が理論分子量と一致することを確認した。
 ポリエチレングリコール鎖(PEG)が5’末端または3’末端に付加されたアプタマーは次のようにして合成した。まず初めに5’末端または3’末端にアミノ基を有するリンカーが付加したアプタマーを核酸合成機を用いて合成した。5’末端の場合はssH Linker(SAFC)またはDMS(O)MT-AMINO-MODIFIFIER C6 (GLENRESERCH)を、3’末端の場合はTFA Amino C-6 lcaa CPG(ChemGenes)を用いた。これらアミノ基が付加したアプタマーはHPLCで精製後、HPLCおよびMALDI-TOFMSで純度分析した。次にこれらのアプタマーをN-hydroxysuccinimideの活性基が付加された分子量40000の2分岐GS型PEG(SUNBRIGHT GL2-400GS2 日油製)、分子量40000の2分岐TS型PEG(SUNBRIGHT GL2-400TS 日油製)、分子量40000の4分岐TS型PEG(SUNBRIGHT GL4-400TS 日油製)、分子量80000の2分岐TS型PEG(SUNBRIGHT GL2-800TS 日油製)、又は分子量80000の4分岐TS型PEG(SUNBRIGHT GL4-800TS 日油製)と混合し、室温下で反応させ、アミド結合にてPEGとアプタマーを連結した。反応終了後、HPLCで精製および純度分析を行った。
 このようにして得られた、PEGが末端修飾された本発明のアプタマーの部分構造の例を以下に示す。
(1)2分岐GS型PEGがssH linker(Ta)を介してアプタマーと結合した構造:
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
(2)2分岐GS型PEGがTFA Amino C-6(Tc)を介してアプタマーと結合した構造:
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006

 
(3)2分岐TS型PEGがssH linker(Ta)を介してアプタマーと結合した構造:
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007

 
(4)4分岐TS型PEGがssH linker(Ta)を介してアプタマーと結合した構造:
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
(5)4分岐TS型PEGがDMS(O)MT-AMINO-MODIFIFIER C6(Tb)を介してアプタマーと結合した構造:
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
 以下の表1に、実際に得られたアプタマーID:1~54で表されるアプタマーのヌクレオチドを示す。
 特に記載が無い限り、ヌクレオチド間の結合はホスホジエステル結合である。小文字はRNA、大文字はDNA、sはホスホロチオエート結合をそれぞれ示す。ヌクレオチドにおける括弧はそのリボースの2’位の修飾を示し、Fはフッ素原子、MはO-メチル基、LはLocked Nucleic Acid(LNA)を表わす。例えば下記でg(M)と記載された場合、2’位がO-メチル基で修飾されたgを意味する。TaはssH linkerをPEGとアプタマーとの連結に用いた場合のリンカー部分を、TbはDMS(O)MT-AMINO-MODIFIFIER C6 をPEGとアプタマーとの連結に用いた場合のリンカー部分を、TcはTFA Amino C-6をPEGとアプタマーとの連結に用いた場合のリンカー部分を示す。idTはinverted dTを示す。PEG40GS2は分子量40000の2分岐GS型(SUNBRIGHT GL2-400GS2 日油製)、PEG40TS2は分子量40000の2分岐TS型(SUNBRIGHT GL2-400TS 日油製)、PEG40TS4は分子量40000の4分岐TS型(SUNBRIGHT GL4-400TS 日油製)、PEG80TS2は分子量80000の2分岐TS型(SUNBRIGHT GL2-800TS 日油製)、PEG80TS4は分子量80000の4分岐TS型(SUNBRIGHT GL4-800TS 日油製)である。
 アプタマーID:1~30で表わされるアプタマーは、共通配列UGAAAGAAACC(配列番号67)を含んでいる。アプタマーID:31~51で表わされるアプタマーは、共通配列CGAACAAAACU(配列番号68)を含んでいる。アプタマーID:52、53、54で表わされるアプタマーはそれぞれ共通配列UGAAAAAAACC(配列番号66)、CGAAAGAAACU(配列番号69)を含んでいる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000016
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000017
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000018
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000019
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000020
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000021
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000022
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000023
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000024
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000025
 
(2)コレステロール付加アプタマーの作製
 PCT/JP09/066457に記載された配列番号30(6)で表わされるアプタマーを基にして、5’末端にコレステロールを付加したアプタマーを作製した。コレステロール付加アプタマーは、ホスホアミダイト法で、化学合成により作製した。コレステロールはChemGenes社製のコレステロールアミダイト(TEG cholesterol,non-DMT,CLP-2704)を用いた。
 得られたコレステロール付加アプタマーの構造の一例を下記に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000026
 以下の表2に、実際に得られたアプタマーID:55~63で表されるアプタマーを示す。特に記載が無い限り、ヌクレオチド間の結合はホスホジエステル結合である。小文字はRNAを、大文字はDNAを、ヌクレオチドにおける括弧はそのリボースの2’位の修飾を示し、Fはフッ素原子、MはO-メチル基を表わす。sはホスホロチオエート結合を示す。例えば下記でg(M)sTと記載された場合、2’位がO-メチル基で修飾されたgとTとがホスホロチオエート結合で連結していることを意味する。Cholはコレステロール、idTはinverted dTを示す。アプタマーID:55~63で表されるアプタマーは、5’末端にコレステロールを有することを特徴とする。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000027
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000028
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000029
実施例2:NGFに結合するRNAアプタマー
 実施例1で作成したアプタマーID:1~63(ただし、PEG化されたアプタマーであるアプタマーID:26(16)、(17)、(64)~(72)を除く。)で表わされるアプタマーのNGFに対する結合活性を、表面プラズモン共鳴法により評価した。
 測定装置はBIAcore社製のBIAcore2000を使用し、センサーチップとしてアミノ基と反応するCM5を用いた。ヒトNGFは固定化溶液(10mM酢酸ナトリウム、pH6)に溶解し25~40μg/mlとした。タンパク質側のアミノ基とチップ側のカルボキシル基の反応にはEthyl-3-carbodiimide hydrochlorideとN-hydroxysuccinimideを用いた。反応後、ethanolamine-HClによるブロッキングを行った。NGFの固定化量は3,000~4,000RUとした。アナライト用のアプタマーは0.15μM~0.5μMに調製した。ランニングバッファーには溶液Aを用いた。ここで溶液Aとは145mM塩化ナトリウム、5.4mM塩化カリウム、1.8mM塩化カルシウム、0.8mM塩化マグネシウム、20mMトリス(pH7.6)、0.05% ツイーン20の混合溶液である。再生用液として1M NaClと50mM NaOHの混合溶液を用いた。NGFはFC2に固定化し、FC1の結果を引くことで最終的なセンサーグラムとした。
 測定の結果、アプタマーID:1~63(ただし、PEG化されたアプタマーであるアプタマーID:26(16)、26(17)、26(64)~26(72)を除く。)で表されるアプタマーの全てが、有意にNGFに結合することがわかった。その一例としてアプタマーID:26、48、57で表されるアプタマーとNGFが結合する様子を図1に示す。アプタマーID:26(-)で表わされるアプタマーは、アプタマーID:26で表されるアプタマーの19番目のgをO-メチル修飾されたgにしたものである。このgは以下で示す共通配列中のgで修飾を加えると生理活性が大きく低下することが分かっている。以上より、アプタマーID:1~63で表されるアプタマーはNGFに特異的に結合するアプタマーであることが示された。
 実施例1で得られたアプタマーID:1~8、26(2)、31~38、52~56、61、63で表されるアプタマーがNGFとNGF受容体(TrkA)の結合を阻害するかどうか、表面プラズモン共鳴法を用いて調べた。
 BIAcore社のプロトコールに従って、CM5センサーチップにProtein A(21181,PIERCE)を固定化した。そこに、IgGのFc部分が融合したヒトTrkA-Fc(175-TK,R&D systems)を約500~700RU固定化した。アナライトとしてNGF(0.1μM)とアプタマー(0.2μM)を混合して30分保持したものをインジェクションした。もしアプタマーがNGFとTrkAの結合を阻害する場合はセンサーグラムのシグナルは上がらないが、もし阻害しない場合は三者複合体を形成しシグナルが上がることが予想される。また、NGFがアプタマーよりも受容体に強く結合する場合は、アプタマーがはずれて、NGFが受容体と結合する場合もある。阻害実験を開始する前にTrkAにNGFが結合することを確認した。アプタマーを含まないNGFとNGF受容体の結合量を100とし、アプタマーを添加した場合のNGFとNGF受容体の結合量を補正値として求めた。ここで結合量は、BIAcoreのセンサーグラムのピークトップでのRU値(NGFのインジェクション終了直後のRU値)とした。100からこの補正値を引いた値を阻害活性%とし、90%以上を阻害活性ありとした。
 実験の結果、アプタマーID:1~8、26(2)、31~38、52~56、61、63で表されるアプタマーの全てがNGFとTrkAの結合を阻害することがわかった。もう一つの受容体P75(p75-Fc;R&D systems)に対しても同様な実験をおこなった。その結果、実施例1で得られたアプタマーID:26(2)、56、61、63で表されるアプタマーの全てがNGFとP75の結合を90%以上阻害することがわかった。
実施例3:アプタマーの神経突起伸長阻害活性
 PC12細胞のサブクローンであるNeuroscreen-1細胞を用いて、実施例1で得たアプタマーの神経突起伸長阻害活性を評価した。
 コラーゲンタイプIVでコートした96ウェル平底プレートに1ウェルあたり2500個の細胞を2.5%ウマ血清と1.25%胎児ウシ血清を含むRPMI-1640培地で1日培養した。そこに室温もしくは37℃にて30分間から1時間無血清のRPMI-1640培地中で予め反応させたヒトNGF(最終濃度1.1nMもしくは0.38nM)とアプタマー(最終濃度500~0.01nM)の混合溶液を添加した。2日後にCellomics Neurite Outgrowth Kit(Thermo Scientific社製)を使用して細胞質と核を染色し、Cellomics ArrayScan VTI(Thermo Scientific社製)によって1細胞あたりの神経突起長を測定した。NGFのみの添加の際に得られた1細胞あたりの神経突起長を阻害活性0%、NGF無添加で2日間培養して得られた1細胞あたりの神経突起長を阻害活性100%として、NGFとアプタマーを混合添加した場合に得られた1細胞あたりの神経突起長から、アプタマーの阻害活性を算出した。阻害活性が0以下の場合は0%とした。50%阻害濃度(IC50)は、50%阻害活性を挟む上下二点の濃度より求めた。実験の結果を表3-1~3-3に示す。
 表3-1~3-4においてIC50値を「<X」と記載したものは、記載した濃度Xが測定最低濃度であった場合において阻害活性が50%以上であったことを示し、IC50値を「>X」と記載したものは、記載した濃度Xが測定最高濃度であった場合に阻害活性が50%以下であったことを示す。*で示した値はNGFの濃度が0.38nMの場合であり、他はNGFの濃度が1.1nMの場合である。カッコ内の数値はPCT/JP09/066457に記載したIC50値である。
 その結果、得られたアプタマーの多くが、IC50が10nM以下の高い活性を有するアプタマーであり、中にはIC50が1nM以下のアプタマー、さらにはIC50が0.3nM以下のアプタマーも存在することがわかった。特にアプタマーID:26(18)以降のアプタマーは、IC50値が0.3nM以下0.3nMのアプタマーであった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000030
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000031
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000032
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000033
 
実施例4:アプタマーの細胞増殖阻害活性(TF-1アッセイ)
 TF-1細胞を用いた増殖阻害評価系により実施例1で得たアプタマーの阻害活性を評価した。
 ヒト赤白血病細胞株であるTF-1細胞(ATCC Number:CRL-2003)にレトロウイルスベクターを用いて二つのNGF受容体(ヒトTrkAおよびヒトp75)遺伝子を導入し、二つの受容体を同時に安定的に高発現する細胞を作製した。この細胞を20%の胎児ウシ血清を含むRPMI-1640培地に懸濁し、白色の96ウェル平底プレートに1ウェルあたり1000個(50μL)の細胞を播種した。そこに室温にて30分間無血清のRPMI-1640培地中で予め反応させたヒトNGF(最終濃度0.076nM)とアプタマー(最終濃度30~0.01nM)の混合溶液50μLを添加し、3日後にCellTiter-Glo Luminescent Cell Viability Assay(Promega社製)のCellTiter-Glo試薬を各ウェルに100μL添加後、マイクロプレートリーダーにより化学発光を測定し、NGF刺激によるTF-1細胞の増殖を評価した。NGFのみの添加で細胞を3日間培養して得られた1ウェルあたりの発光量を阻害活性0%、NGF無添加で3日間培養して得られた1ウェルあたりの発光量を阻害活性100%として、NGFとアプタマーを混合添加した場合に得られた1ウェルあたりの発光量から、アプタマーの阻害活性を算出した。阻害活性が0以下の場合は0%とした。50%阻害濃度(IC50)は、50%阻害活性を挟む上下二点の濃度より求めた。結果を表4-1~4-3に示す。
 IC50値を「<X」と記載したものは、記載した濃度Xが測定最低濃度であった場合において阻害活性が50%以上であったことを示し、IC50値を「>X」と記載したものは、記載した濃度Xが測定最高濃度であった場合に阻害活性が50%以下であったことを示す。 その結果、得られたアプタマーの多くが、IC50が10nM以下の高い活性を有するアプタマーであり、中にはIC50が1nM以下のアプタマー、さらにはIC50が0.3nM以下のアプタマーも存在することがわかった。特にアプタマーID:26(18)以降のアプタマーのうち、アプタマーID:26(36)、26(37)、26(40)以外のアプタマーが、細胞増殖阻害実験でIC50値0.3nM以下を示すので、これらのアプタマーがNGFに対して高い阻害活性を有していることがわかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000034
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000035
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000036
 
実施例5:先行文献記載のNGFアプタマーとの比較
 先行文献(Binkley J et al.,(1995)Nucleic Acids Res.23, 3198)に記載のNGFアプタマーの結合活性および神経突起伸長阻害活性の比較を行った。
 先行文献記載のアプタマーは全て未修飾RNAであり、本明細書記載の配列と一致するものはない。先行文献記載のアプタマーとして結合活性が高いH1、L2、L6を選び、T7ポリメラーゼで転写して作製した。結合活性は実施例2と同様な方法で評価した。NGFに配列番号57で表わされるアプタマーが結合した場合の最大RU値を分子量で割った値を100%とし、80%以上の場合は“++”、50%以上の場合は“+”、50%以下の場合は“-”とした。アプタマーの分子量の違いを考慮して、得られたRU値を分子量で割って補正した。また神経突起伸長阻害活性は実施例3と同様な方法で評価した。結果を表5に示す。
 実験の結果、L2とL6は顕著な結合を示さなかった。L2またはL6を固定化してNGFとの結合を見た場合には結合が見られたので、NGFを固定化したことでL2およびL6のNGFに対する親和性が低下したものと考えられる。一方、突起伸長阻害活性について、本発明のアプタマーは高い神経突起伸長阻害活性を有するのに対し、H1、L2、L6は500nMでも神経突起の伸長を阻害しないことがわかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000037
 
実施例6:WO02/077262に記載されたNGFアプタマーとの比較
 WO02/077262公報に記載されたNGFアプタマーの結合活性および神経突起伸張阻害活性、細胞増殖阻害活性を測定し、本発明で特定されたアプタマーID:26(19)で表わされるアプタマーと比較した。WO02/077262公報に記載されたNGFアプタマーとしてSeq ID No.38および42を選んだ。これらのアプタマーの配列は以下の通りであり、実施例1で示すホスホアミダイト法により作製した。ここで、Tとしてブロム化dUを用いた(T=5-BrdU(5-bromo-2’-deoxyuridine))。
Seq ID No.38
ATATATATGGGAGGACGATGCGGGCACACTTAAATCCACTTCACCTTACAATTCCTTTATCTGCAGACGACGAGCGGGAAAAAAAA
Seq ID No.42
ATATATATGGGAGGACGATGCGGGCCCCAAACACTTGTTCCTATCTTTCAACCCCCCTTGATCCAGACGACGAGCGGGAAAAAAAA
 結合活性は、表面プラズモン共鳴法を用いて実施例2と同様な方法で評価した。NGFにアプタマーID:26(19)で表わされるアプタマーが結合した場合の最大RU値を分子量で割った値を100%とし、80%以上の場合は“++”、79~51%の場合は“+”、50%以下の場合は“-”とした。アプタマーの分子量の違いを考慮して、得られたRU値を分子量で割って補正した。また神経突起伸長阻害活性と細胞増殖阻害活性は実施例3および4と同様な方法で評価した。結果を表6に示す。
 実験の結果、WO02/077262公報に記載されたNGFアプタマーの結合活性は、本発明のアプタマーと比較して極めて低いことがわかった。また、神経突起伸長阻害活性と細胞増殖阻害活性については、本発明のアプタマーは高い阻害活性を示したのに対して、WO02/077262公報に記載されたアプタマーは阻害活性を全く示さなかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000038
実施例7:他のニューロトロフィンとの交差反応性
 ニューロトロフィンはNGF関連遺伝子ファミリーの総称であり、他にBDNF(脳由来神経栄養因子)、NT-3(ニューロトロフィン-3)、NT-4/5(ニューロトロフィン-4/5)が知られている。一方、ニューロトロフィンの受容体には、低親和性受容体p75と高親和性受容体Trkが同定されている。Trkはまたファミリーを形成して、NGFの受容体であるTrkA、BDNFとNT-4/5の受容体であるTrkB、NT-3受容体であるTrkCの3種類が存在する。本発明で特定されたアプタマーはNGFに対して高い結合活性および阻害活性を有しているが、他のニューロトロフィンに対する活性を調べた。
 アプタマーID:26(2)で表わされるアプタマーとヒトBDNF(R&D systems社製)、ヒトNT-3(R&D systems社製)、ヒトNT-4/5(R&D systems社製)の結合を、実施例2と同様に表面プラズモン共鳴法で評価した。
 その結果、NT-3に対する結合は観察されなかった。また、BDNFとNT-4/5に対しては乖離速度が非常に速く、NGFに対する結合活性よりも明らかに低いことがわかった。
 アプタマーID:26(2)、52、63~65で表わされるアプタマーのBDNF、NT-3、NT-4/5に対する生理阻害活性を、TF-1細胞を用いた増殖阻害アッセイで評価した。
 ヒト赤白血病細胞株であるTF-1細胞(ATCC Number:CRL-2003)にレトロウイルスベクターを用いて各神経栄養因子に対するヒト受容体遺伝子(TrkB、TrkC、p75)を導入し、それらの受容体を安定的に高発現する細胞を作製した。尚、BDNFへの阻害活性評価にはTrkBおよびp75を導入したTF-1細胞、NT-3に対する評価にはTrkCおよびp75を導入したTF-1細胞、そしてNT-4/5に対する評価にはTrkBのみを導入したTF-1細胞を使用した。これらの細胞を20%の胎児ウシ血清を含むRPMI-1640培地に懸濁し、白色の96ウェル平底プレートに1ウェルあたり1000個(50μL)の細胞を播種した。そこに室温にて30分間無血清のRPMI-1640培地中で予め反応させたヒトBDNF(最終濃度0.074nM)あるいはNT-3(最終濃度0.074nM)あるいはNT-4/5(最終濃度0.071nM)とアプタマー(最終濃度30~0.01nM)の混合溶液50μLを添加し、3日後にCellTiter-Glo Luminescent Cell Viability Assay(Promega社製)のCellTiter-Glo試薬を各ウェルに100μL添加後、マイクロプレートリーダーにより化学発光を測定した。BDNFあるいはNT-3あるいはNT-4/5のみの添加で細胞を3日間培養して得られた1ウェルあたりの発光量を阻害活性0%、BDNFあるいはNT3あるいはNT-4/5無添加で3日間培養して得られた1ウェルあたりの発光量を阻害活性100%として、BDNFあるいはNT3あるいはNT-4/5とアプタマーを混合添加した場合に得られた1ウェルあたりの発光量から、アプタマーの阻害活性を算出した。阻害活性が0以下の場合は0%とした。50%阻害濃度(IC50)は、50%阻害活性を挟む上下二点の濃度より求めた。結果を表7に示す。
 IC50値を「>X」と記載したものは、記載した濃度Xが測定最高濃度であった場合に阻害活性が50%以下であったことを示す。測定した全てのアプタマーはBDNFおよびNT-3に対してIC50が1000nM以上であった。また、NT-4/5に対してはIC50が300nM以上であった。以上の結果から、これらのアプタマーはNGFを特異的に阻害することがわかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000039
実施例8:NGFアプタマーによる鎮痛作用
 NGF誘発性疼痛に対するNGFアプタマーの鎮痛作用を検討する為、ラット後肢へのNGF皮下投与により引き起こされる熱性痛覚過敏モデルを使用した。実験にはJcl:SD系ラット(6週齢)を使用した。熱性痛覚過敏の指標として、足底熱刺激測定装置(Ugo Basile社製)からの肢底への赤外線照射に対する逃避行動の反応潜時を用いた。試験前日に評価系への馴化を行った。試験当日の投与前に逃避行動反応潜時を測定し、10秒以上20秒未満の個体を使用した。Vehicle(20mM Tris-HCl(pH7.6)、145mM NaCl、5.4mM KCl、0.8mM MgCl、1.8mM CaCl、0.1% BSA)にRecombinant human beta-NGF(R&D Systems、終濃度50μg/ml)および被験物質を混合し、室温30分間のインキュベート後、左後肢底に10μl皮下投与し、3時間後及び5時間後に逃避行動反応潜時を測定した。アプタマーID:26(2)で表される抗NGFアプタマーを、終濃度0.5、5、10mg/ml(NGFに対するモル比 約:10、100、200倍)で投与した。コントロールとして、VehicleまたはVehicleとNGFとの混合液を同様に投与した。結果を表8に示す(Mean±SEM、Vehicle群およびNGF群:n=12、配列番号26(2)投与群:n=9)。
 投与3時間後及び5時間後で、Vehicle群に比べてNGF群で逃避行動反応潜時が有意に小さかった。投与3時間後では、5、10mg/mlのアプタマーID:26(2)投与群の逃避行動反応潜時がNGFのみの投与群に比べて有意に大きく(p<0.05)、投与5時間後では、0.5、5、10mg/mlアプタマーID:26(2)投与群の逃避行動反応潜時がNGFのみの投与群に比べて大きかった(p<0.01)。このことから、抗NGFアプタマーがNGF誘発性疼痛に対する鎮痛作用を有することが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000040
実施例9:NGFアプタマーによる術後痛モデルにおける鎮痛作用
 NGFアプタマー療法の薬効検討の為、熱性痛覚過敏が引き起こされる術後痛モデルを使用した。実験にはCrl:CD(SD)系ラット(5週齢)を使用した。カテーテルの先端を大腿静脈内に留置し、もう一方の先端をラット背部から体外へ露出した。1週間後にQuick connectインフュージョンシステム(Strategic applications incorporated社製)をラットに装着し、更に1週間後に熱性痛覚過敏を評価した。熱性痛覚過敏の指標として、足底熱刺激測定装置(Ugo Basile社製)からの肢底への赤外線照射に対する逃避行動の反応潜時を用いた。試験開始3日前に評価系への馴化を行った。試験開始日に逃避行動反応潜時を測定し、10秒以上20秒未満の個体を使用した。生理食塩水に溶解したアプタマーID:26(66)で表される抗NGFアプタマーをシリンジポンプ(テルモ社製)を用いて13.61mg/240ml/kg/96hrで持続的に静脈内投与した(なお、アプタマーの質量は、PEGを含まない部分に相当する質量である)。コントロールとして、Vehicleを同様に投与した。投与開始1時間後に右後肢底の皮膚および筋膜を切開後、屈筋を垂直に二分し、皮膚を縫合した。切開手術後、1、2、3、4日後に逃避行動反応潜時を測定した。結果を表9に示す(Mean±SEM、n=9)。
 Vehicle群において、投与・切開術1、2、3、4日後の逃避行動反応潜時が投与・切開術前に比べて有意に小さかった(p<0.01)。投与・切開術1、2、3、4日後において、アプタマーID:26(66)のアプタマー投与群の逃避行動反応潜時がVehicle群に比べて有意に大きかった(1、2、4日後:p<0.01、3日後:p<0.05)。このことから抗NGFアプタマーは術後痛モデルに対する鎮痛作用を有することが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000041
 本発明のアプタマー及び複合体は、疼痛や炎症性疾患などの疾患に対する医薬、あるいは診断薬、試薬として有用であり得る。本発明のアプタマー及び複合体はまた、NGFの精製及び濃縮、並びにNGFの検出及び定量に有用であり得る。
 本出願は、日本で出願された特願2010-068546(出願日:2010年3月24日)を基礎としており、それらの内容は本明細書に全て包含されるものである。

Claims (37)

  1. 以下の(1)および(2)を満たすNGFに結合するアプタマー:
    (1)UGAAARAAACC(配列番号64)またはCGAAMRAAACU(配列番号65)で表される配列を含む。
    (2)塩基長が73以下である。
  2. NGFとNGF受容体との結合を阻害する、請求項1に記載のアプタマー。
  3. NGFの神経細胞突起伸長活性または細胞増殖活性を阻害する、請求項1または2に記載のアプタマー。
  4. 50%阻害濃度が10nM以下である、請求項3に記載のアプタマー。
  5. NT-3に結合しない、請求項1~4のいずれか一項に記載のアプタマー。
  6. BDNF、NT-3又はNT-4/5の細胞増殖活性を阻害しない、請求項1~5のいずれか一項に記載のアプタマー。
  7. 以下の(a)、(b)又は(c)のいずれかのヌクレオチド配列を含む、請求項1または2に記載のアプタマー:
    (a)配列番号1~54のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい);
    (b)配列番号1~54のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)において、1又は数個のヌクレオチドが置換、欠失、挿入あるいは付加されたヌクレオチド;又は
    (c)配列番号1~54のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)と70%以上の同一性を有するヌクレオチド配列。
  8. 少なくとも1つのヌクレオチドが修飾されている、請求項1~7のいずれか一項に記載のアプタマー。
  9. inverted dT又はポリエチレングリコールで修飾されている、請求項8に記載のアプタマー。
  10. inverted dT又はポリエチレングリコールが、アプタマーの5’末端または3’末端に結合している、請求項9に記載のアプタマー。
  11. 各ピリミジンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、請求項8~10のいずれか一項に記載のアプタマー。
  12. 各プリンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、請求項8~10のいずれか一項に記載のアプタマー。
  13. 配列番号1~54のいずれかから選択されるヌクレオチド配列を含み、塩基長が73以下である核酸。
  14. 少なくとも1つのヌクレオチドが修飾されている、請求項13に記載の核酸。
  15. inverted dT又はポリエチレングリコールで修飾されている請求項14に記載の核酸。
  16. inverted dT又はポリエチレングリコールが、アプタマーの5’末端または3’末端に結合している、請求項15に記載の核酸。
  17. 各ピリミジンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、請求項14~16のいずれか一項に記載の核酸。
  18. 各プリンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、請求項14~16のいずれか一項に記載の核酸。
  19. NGFに結合する、疎水性物質付加アプタマー。
  20. NGFとNGF受容体との結合を阻害する、請求項19に記載のアプタマー。
  21. NGFの神経細胞突起伸長活性または細胞増殖活性を阻害する、請求項20に記載のアプタマー。
  22. 50%阻害濃度が10nM以下である、請求項21に記載のアプタマー。
  23. 以下の(a’)、(b’)又は(c’)のいずれかのヌクレオチド配列を含む、請求項19または20に記載のアプタマー:
    (a’)配列番号55~63のいずれかから選択されるヌクレオチド(但し、ウラシルはチミンであってもよい);
    (b’)配列番号55~63のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)において、1又は数個のヌクレオチドが置換、欠失、挿入あるいは付加されたヌクレオチド配列;又は
    (c’)配列番号55~63のいずれかから選択されるヌクレオチド配列(但し、ウラシルはチミンであってもよい)と70%以上の同一性を有するヌクレオチド配列。
  24. 疎水性物質がアプタマーの5’末端に結合している、請求項19~23のいずれか一項に記載のアプタマー。
  25. 疎水性物質がコレステロールである、請求項19~24のいずれか一項に記載のアプタマー。
  26. 少なくとも1つのヌクレオチドが修飾されている、請求項19~25のいずれか一項に記載のアプタマー。
  27. inverted dTで修飾されている、請求項26に記載のアプタマー。
  28. inverted dTが、アプタマーの3’末端に結合している、請求項27に記載のアプタマー。
  29. 各ピリミジンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、請求項26~28のいずれか一項に記載のアプタマー。
  30. 各プリンヌクレオチドのリボースの2’位のヒドロキシル基が、同一又は異なって、無置換であるか、水素原子、フッ素原子及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置き換えられている、請求項26~28のいずれか一項に記載のアプタマー。
  31. 請求項1~12、19~30のいずれか一項に記載のアプタマーまたは請求項13~18のいずれか一項に記載の核酸、及び機能性物質を含む複合体。
  32. 機能性物質が、親和性物質、標識用物質、酵素、薬物送達媒体又は薬物である、請求項31に記載の複合体。
  33. 請求項1~12、19~30のいずれか一項に記載のアプタマー、請求項13~18のいずれか一項に記載の核酸、あるいは請求項31又は32に記載の複合体を含む医薬組成物。
  34. 請求項1~12、19~30のいずれか一項に記載のアプタマー、請求項13~18のいずれか一項に記載の核酸、あるいは請求項31又は32に記載の複合体を含む抗疼痛剤。
  35. 請求項1~12、19~30のいずれか一項に記載のアプタマー、請求項13~18のいずれか一項に記載の核酸、あるいは請求項31又は32に記載の複合体を含む抗炎症剤。
  36. 請求項1~12、18~30のいずれか一項に記載のアプタマー、請求項13~18のいずれか一項に記載の核酸、あるいは請求項31又は32に記載の複合体を、それを必要とする対象に投与することを特徴とする、疼痛又は炎症を伴う疾患を治療又は予防する方法。
  37. 疼痛又は炎症を伴う疾患の治療又は予防のための、請求項1~12、18~30のいずれか一項に記載のアプタマー、請求項13~18のいずれか一項に記載の核酸、あるいは請求項31又は32に記載の複合体。
     
PCT/JP2011/057105 2010-03-24 2011-03-24 Ngfに対するアプタマー及びその使用 WO2011118682A1 (ja)

Priority Applications (14)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL11759487T PL2551346T3 (pl) 2010-03-24 2011-03-24 Aptamer dla NGF i jego zastosowanie
CN201180015552.4A CN102844436B (zh) 2010-03-24 2011-03-24 针对ngf的适配体及其用途
SI201130783A SI2551346T1 (sl) 2010-03-24 2011-03-24 Aptamer za NGF in njegova uporaba
CA2794199A CA2794199C (en) 2010-03-24 2011-03-24 Aptamer for ngf and use thereof
KR1020127027569A KR101806429B1 (ko) 2010-03-24 2011-03-24 Ngf에 대한 압타머 및 그 용도
JP2012504603A JP5027956B2 (ja) 2010-03-24 2011-03-24 Ngfに対するアプタマー及びその使用
ES11759487.9T ES2567270T3 (es) 2010-03-24 2011-03-24 Aptámero para FCN y utilización del mismo
EP11759487.9A EP2551346B1 (en) 2010-03-24 2011-03-24 Aptamer for ngf and use thereof
AU2011230388A AU2011230388B2 (en) 2010-03-24 2011-03-24 Aptamer for NGF and use thereof
US13/636,974 US9175292B2 (en) 2010-03-24 2011-03-24 Aptamer for NGF and use thereof
BR112012024232A BR112012024232A8 (pt) 2010-03-24 2011-03-24 "aptâmero de 73 nucleotídeos ou menos, complexo, composição farmacêutica e medicamento anti-dor"
IN3036KON2012 IN2012KN03036A (ja) 2010-03-24 2011-03-24
DK11759487.9T DK2551346T3 (en) 2010-03-24 2011-03-24 Aptamer for NGF and use thereof.
HRP20160378TT HRP20160378T1 (hr) 2010-03-24 2016-04-12 Aptamer za ngf i njegova uporaba

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2010068546 2010-03-24
JP2010-068546 2010-03-24

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2011118682A1 true WO2011118682A1 (ja) 2011-09-29

Family

ID=44673231

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2011/057105 WO2011118682A1 (ja) 2010-03-24 2011-03-24 Ngfに対するアプタマー及びその使用

Country Status (17)

Country Link
US (1) US9175292B2 (ja)
EP (1) EP2551346B1 (ja)
JP (1) JP5027956B2 (ja)
KR (1) KR101806429B1 (ja)
CN (1) CN102844436B (ja)
AU (1) AU2011230388B2 (ja)
BR (1) BR112012024232A8 (ja)
CA (1) CA2794199C (ja)
DK (1) DK2551346T3 (ja)
ES (1) ES2567270T3 (ja)
HR (1) HRP20160378T1 (ja)
HU (1) HUE028939T2 (ja)
IN (1) IN2012KN03036A (ja)
PL (1) PL2551346T3 (ja)
SI (1) SI2551346T1 (ja)
TW (1) TWI500425B (ja)
WO (1) WO2011118682A1 (ja)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013047844A1 (ja) * 2011-09-28 2013-04-04 株式会社リボミック Ngfに対するアプタマー及びその用途
US8598140B2 (en) 2010-04-12 2013-12-03 Somalogic, Inc. Aptamers to β-NGF and their use in treating β-NGF mediated diseases and disorders
WO2015147290A1 (ja) * 2014-03-27 2015-10-01 株式会社リボミック オートタキシンに結合しオートタキシンの生理活性を阻害するアプタマー及びその利用

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106018848A (zh) * 2015-11-29 2016-10-12 卢美珍 一种用于人脑疾病检测的试剂盒
JP6841430B2 (ja) * 2015-12-04 2021-03-10 全薬工業株式会社 血中滞留性を改善した抗il−17アプタマー
WO2019210194A1 (en) * 2018-04-26 2019-10-31 Vitrisa Therapeutics, Inc. Pegylated compositions for ocular use, and methods thereof
CN114540349A (zh) * 2020-11-27 2022-05-27 中国科学院分子细胞科学卓越创新中心 结合yb-1蛋白的核酸分子

Citations (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1991019813A1 (en) 1990-06-11 1991-12-26 The University Of Colorado Foundation, Inc. Nucleic acid ligands
WO1994008050A1 (en) 1992-09-29 1994-04-14 Nexagen, Inc. Nucleic acid ligands and methods for producing the same
WO1995007364A1 (en) 1993-09-08 1995-03-16 Nexstar Pharmaceuticals, Inc. Nucleic acid ligands and improved methods for producing the same
US5660985A (en) 1990-06-11 1997-08-26 Nexstar Pharmaceuticals, Inc. High affinity nucleic acid ligands containing modified nucleotides
WO2002077262A2 (en) 2001-03-22 2002-10-03 Somalogic, Inc. Method and apparatus for the automated generation of nucleic acid ligands
WO2003070984A1 (en) 2002-02-15 2003-08-28 Somalogic, Inc. Methods and reagents for detecting target binding by nucleic acid ligands
WO2004032870A2 (en) 2002-10-08 2004-04-22 Rinat Neuroscience Corp. Methods for treating post-surgical pain by admisnistering a nerve growth factor antagonist and compositions containing the same
WO2004073653A2 (en) 2003-02-19 2004-09-02 Rinat Neuroscience Corp. Methods for treating pain by administering a nerve growth factor antagonist and an nsaid and compositions containing the same
WO2004096122A2 (en) 2002-10-08 2004-11-11 Rinat Neuroscience Corp. Use of ngf antagonists and opioids for treating pain
WO2005000194A2 (en) 2002-10-08 2005-01-06 Rinat Neuroscience Corp. Methods for treating post-surgical pain by administering an anti-nerve growth factor antagonist antibody and compositions containing the same
WO2005111077A2 (en) 2004-04-07 2005-11-24 Rinat Neuroscience Corp. Methods for treating bone cancer pain by administering a nerve growth factor antagonist
WO2006110883A2 (en) 2005-04-11 2006-10-19 Rinat Neuroscience Corp. Methods for treating osteoarthritis pain by administering a nerve growth factor antagonist and compositions containing the same
WO2008059877A1 (fr) * 2006-11-14 2008-05-22 Ribomic Inc. Aptamère contre la midkine et son utilisation
WO2010008001A1 (ja) * 2008-07-14 2010-01-21 国立大学法人 東京大学 Il-17に対するアプタマー及びその使用

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
MX2011003144A (es) * 2008-09-24 2011-05-19 Ribomic Inc Aptamero para factor de crecimiento de nervio y uso del mismo.

Patent Citations (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1991019813A1 (en) 1990-06-11 1991-12-26 The University Of Colorado Foundation, Inc. Nucleic acid ligands
US5660985A (en) 1990-06-11 1997-08-26 Nexstar Pharmaceuticals, Inc. High affinity nucleic acid ligands containing modified nucleotides
WO1994008050A1 (en) 1992-09-29 1994-04-14 Nexagen, Inc. Nucleic acid ligands and methods for producing the same
WO1995007364A1 (en) 1993-09-08 1995-03-16 Nexstar Pharmaceuticals, Inc. Nucleic acid ligands and improved methods for producing the same
WO2002077262A2 (en) 2001-03-22 2002-10-03 Somalogic, Inc. Method and apparatus for the automated generation of nucleic acid ligands
WO2003070984A1 (en) 2002-02-15 2003-08-28 Somalogic, Inc. Methods and reagents for detecting target binding by nucleic acid ligands
WO2004032870A2 (en) 2002-10-08 2004-04-22 Rinat Neuroscience Corp. Methods for treating post-surgical pain by admisnistering a nerve growth factor antagonist and compositions containing the same
WO2004096122A2 (en) 2002-10-08 2004-11-11 Rinat Neuroscience Corp. Use of ngf antagonists and opioids for treating pain
WO2005000194A2 (en) 2002-10-08 2005-01-06 Rinat Neuroscience Corp. Methods for treating post-surgical pain by administering an anti-nerve growth factor antagonist antibody and compositions containing the same
WO2004073653A2 (en) 2003-02-19 2004-09-02 Rinat Neuroscience Corp. Methods for treating pain by administering a nerve growth factor antagonist and an nsaid and compositions containing the same
WO2005111077A2 (en) 2004-04-07 2005-11-24 Rinat Neuroscience Corp. Methods for treating bone cancer pain by administering a nerve growth factor antagonist
WO2006110883A2 (en) 2005-04-11 2006-10-19 Rinat Neuroscience Corp. Methods for treating osteoarthritis pain by administering a nerve growth factor antagonist and compositions containing the same
WO2008059877A1 (fr) * 2006-11-14 2008-05-22 Ribomic Inc. Aptamère contre la midkine et son utilisation
WO2010008001A1 (ja) * 2008-07-14 2010-01-21 国立大学法人 東京大学 Il-17に対するアプタマー及びその使用

Non-Patent Citations (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BINKLEY J ET AL., NUCLEIC ACIDS RES, vol. 23, 1995, pages 3198 - 3205
BINKLEY J ET AL., NUCLEIC ACIDS RES., vol. 23, 1995, pages 3198
BINKLEY J. ET AL.: "RNA ligands to human nerve growth factor", NUCLEIC ACIDS RES., vol. 23, no. 16, 1995, pages 3198 - 3205, XP002139707 *
COTTON ET AL., NUCL. ACID. RES, vol. 19, 1991, pages 2629 - 2635
ELLINGTON ET AL., NATURE, vol. 346, 1990, pages 818 - 822
HOBBS ET AL., BIOCHEMISTRY, vol. 12, 1973, pages 5138 - 5145
ID NOS: 1 - 8, vol. 26, no. 2, pages 31 - 38,52-56,61,63
IDS, vol. 26, no. 2, pages 52,63 - 65
OSBORNE S.E. ET AL.: "Nucleic Acid Selection and the Challenge of Combinatorial Chemistry.", CHEM. REV., vol. 97, 1997, pages 349 - 370, XP000683273 *
See also references of EP2551346A4
SPROAT ET AL., NUCL. ACID. RES., vol. 19, 1991, pages 733 - 738
STOLTENBURG R. ET AL.: "SELEX-A (r)evolutionary method to generate high-affinity nucleic acid ligands", BIOMOL. ENG., vol. 24, 2007, pages 381 - 403, XP022251573 *
TUERK ET AL., SCIENCE, vol. 249, 1990, pages 505 - 510
YUKIO SUGIURA: "Synthesis and Analysis of Nucleic Acid", vol. 2, HIROKAWA PUBLISHING COMPANY, article "Nucleic Acid"

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8598140B2 (en) 2010-04-12 2013-12-03 Somalogic, Inc. Aptamers to β-NGF and their use in treating β-NGF mediated diseases and disorders
WO2013047844A1 (ja) * 2011-09-28 2013-04-04 株式会社リボミック Ngfに対するアプタマー及びその用途
US9567589B2 (en) 2011-09-28 2017-02-14 Ribomic Inc. NGF aptamer and application thereof
WO2015147290A1 (ja) * 2014-03-27 2015-10-01 株式会社リボミック オートタキシンに結合しオートタキシンの生理活性を阻害するアプタマー及びその利用
JPWO2015147290A1 (ja) * 2014-03-27 2017-04-13 株式会社リボミック オートタキシンに結合しオートタキシンの生理活性を阻害するアプタマー及びその利用

Also Published As

Publication number Publication date
JP5027956B2 (ja) 2012-09-19
TWI500425B (zh) 2015-09-21
JPWO2011118682A1 (ja) 2013-07-04
HRP20160378T1 (hr) 2016-05-20
HUE028939T2 (en) 2017-01-30
KR20130028917A (ko) 2013-03-20
TW201201817A (en) 2012-01-16
CA2794199C (en) 2017-11-14
AU2011230388A2 (en) 2012-11-15
EP2551346B1 (en) 2016-01-27
BR112012024232A2 (pt) 2016-11-29
AU2011230388B2 (en) 2016-09-08
US9175292B2 (en) 2015-11-03
CN102844436B (zh) 2015-11-25
BR112012024232A8 (pt) 2018-02-06
CA2794199A1 (en) 2011-09-29
DK2551346T3 (en) 2016-04-11
IN2012KN03036A (ja) 2015-04-10
CN102844436A (zh) 2012-12-26
EP2551346A4 (en) 2014-04-30
AU2011230388A1 (en) 2012-11-01
KR101806429B1 (ko) 2017-12-07
ES2567270T3 (es) 2016-04-21
SI2551346T1 (sl) 2016-05-31
US20130052176A1 (en) 2013-02-28
PL2551346T3 (pl) 2016-07-29
EP2551346A1 (en) 2013-01-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6118724B2 (ja) Ngfに対するアプタマー及びその用途
JP5027956B2 (ja) Ngfに対するアプタマー及びその使用
JP5602020B2 (ja) Ngfに対するアプタマー及びその使用
JPWO2015147017A1 (ja) Fgf2に対するアプタマー及びその使用

Legal Events

Date Code Title Description
WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 201180015552.4

Country of ref document: CN

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 11759487

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2012504603

Country of ref document: JP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2794199

Country of ref document: CA

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 3036/KOLNP/2012

Country of ref document: IN

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2011759487

Country of ref document: EP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 20127027569

Country of ref document: KR

Kind code of ref document: A

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2011230388

Country of ref document: AU

Date of ref document: 20110324

Kind code of ref document: A

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 13636974

Country of ref document: US

REG Reference to national code

Ref country code: BR

Ref legal event code: B01A

Ref document number: 112012024232

Country of ref document: BR

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 112012024232

Country of ref document: BR

Kind code of ref document: A2

Effective date: 20120924